Diagnostyka laboratoryjna Shigella. Diagnostyka mikrobiologiczna czerwonki i cholery

UDC 616.935-074(047)

JESTEM.Sadykowa

Kazachski Narodowy Uniwersytet Medyczny

nazwany na cześć S.D. Asfendiyarov, Ałmaty

Katedra Chorób Zakaźnych i Tropikalnych

Rzetelna diagnostyka czerwonki jest jednym z pilnych zadań nadzoru AEI. Dokładna diagnoza czerwonki bakteryjnej jest ważna dla prawidłowego i terminowego leczenia pacjenta oraz wdrożenia niezbędnych środków przeciwepidemicznych. Z danych przedstawionych w przeglądzie wynika, że ​​wobec powszechnego występowania czerwonki, braku czułości i późnego pojawiania się pozytywnych wyników wielu metod diagnostycznych, wskazane jest rozwijanie potencjału diagnostycznego w zakresie wykrywania tego zakażenia.

Słowa kluczowe: diagnostyka, czerwonka, metoda limfocytów wiążących antygen.

Rozpoznanie zakażenia shigella w praktyce klinicznej napotyka istotne trudności ze względu na czynniki obiektywne, do których zalicza się kliniczną patomorfozę czerwonki, wzrost liczby atypowych postaci choroby, występowanie znacznej liczby chorób zakaźnych i niezakaźnych. charakter, które mają objawy kliniczne podobne do czerwonki. W połowie przypadków rozpoznanie „czerwonki klinicznej” kryje w sobie nierozpoznaną chorobę o innej etiologii.

Największe trudności napotyka lekarz podczas wstępnego badania pacjenta przed otrzymaniem wyników paraklinicznych metod diagnostycznych. Rozpoznanie czerwonki jest również trudne w przypadku współistniejących chorób przewodu żołądkowo-jelitowego.

Od początku stosowania etiologicznej diagnostyki laboratoryjnej czerwonki zaproponowano i przetestowano wiele metod. Istnieje wiele klasyfikacji metod diagnostyki etiologicznej infekcji. Metodologicznie klasyfikacja zaproponowana przez B.V. jest najbardziej uzasadniona. Punisher. W odniesieniu do diagnostyki czerwonki zasadami klasyfikacji opartej na metodologii posłużył się B.V. Karalnik, N.M. Nurkina, B.K. Erkinbekova..

Laboratoryjne metody diagnozowania czerwonki obejmują bakteriologiczne (izolacja i identyfikacja patogenu) i immunologiczne. Do tych ostatnich zaliczają się metody immunologiczne in vivo (test alergiczny Tsuverkalova) oraz in vitro. Metody immunologiczne in vitro mają jedną niewątpliwą przewagę nad testem Tsuverkalova – nie wiążą się z wprowadzaniem obcych antygenów do organizmu.

Większość badaczy nadal uważa, że ​​badania bakteriologiczne, które obejmują izolację czynnika chorobotwórczego w czystej kulturze, a następnie jego identyfikację na podstawie cech morfologicznych, biochemicznych i antygenowych, są najbardziej wiarygodną metodą diagnozowania zakażenia shigellozą. Częstość izolacji Shigella z kału pacjentów z klinicznym rozpoznaniem „ostrej czerwonki” według różnych autorów waha się od 30,8% do 84,7%, a nawet 91,1%. Tak duża rozbieżność między różnymi autorami zależy nie tylko od obiektywnych czynników wpływających na skuteczność badań bakteriologicznych, ale także od trafności rozpoznania (lub wykluczenia) „czerwonki klinicznej”. Na skuteczność badań bakteriologicznych wpływają takie obiektywne czynniki, jak charakterystyka przebiegu choroby, sposób pobrania i dostarczenia materiału do laboratorium, jakość pożywek, kwalifikacje personelu, termin wykonania badania. kontakt pacjenta z pracownikami służby zdrowia, stosowanie leków przeciwdrobnoustrojowych przed pobraniem materiału do badania. Ilościowe badanie mikrobiologiczne kału w ostrej czerwonce pokazuje, że w każdej klinicznej postaci zakażenia najbardziej masowe uwolnienie patogenów następuje w pierwszych dniach choroby, a począwszy od 6, a zwłaszcza od 10 dnia choroby, stężenie Shigella w kale znacznie się zmniejsza. TA Avdeeva stwierdził, że niska zawartość Shigella i wyraźna przewaga niepatogennych mikroorganizmów w kale praktycznie wykluczają możliwość bakteriologicznego wykrycia bakterii czerwonki.

Wiadomo, że bakteriologiczne potwierdzenie zakażenia shigella możliwe jest najczęściej podczas badania pacjentów dokładnie w pierwszych dniach choroby – koprokultura patogenu w zdecydowanej większości przypadków zostaje wyizolowana już podczas pierwszego badania. Pozytywne wyniki badania bakteriologicznego obserwuje się jedynie w pierwszych 3 dniach choroby u 45–49% chorych, w ciągu pierwszych 7 dni – u 75%. Tillett i Thomas również uważają, że okres badania pacjentów jest ważnym czynnikiem decydującym o skuteczności metody bakteriologicznej w diagnostyce czerwonki. Według T.A. Avdeeva, w pierwszych dniach choroby najbardziej intensywne uwalnianie patogenu obserwuje się w czerwonce Sonne'a, mniej intensywne w czerwonce Flexnera, a najmniej w czerwonce Flexnera VI; w późniejszych stadiach choroby najdłużej utrzymuje się wysokie stężenie w czerwonce Flexnera, krócej – Shigella Sonne, a najkrócej – Shigella Flexner VI.

Tak więc, choć badanie bakteriologiczne kału jest najpewniejszą metodą diagnozowania zakażenia szigelozą, istotną wadą są wymienione powyżej ograniczenia jego skuteczności. Należy także zwrócić uwagę na ograniczenia wczesnej diagnostyki metodą bakteriologiczną, w której czas trwania analizy wynosi 3-4 dni. W związku z tymi okolicznościami duże znaczenie praktyczne ma zastosowanie innych metod diagnostyki laboratoryjnej. Inna mikrobiologiczna metoda diagnozowania czerwonki również opiera się na wykrywaniu żywych Shigella. Jest to reakcja wzrostu miana faga (PTR), oparta na zdolności określonych fagów do namnażania wyłącznie w obecności homologicznych żywych mikroorganizmów. Wzrost miana faga wskaźnikowego wskazuje na obecność odpowiednich drobnoustrojów w środowisku. Badanie wartości diagnostycznej RSF w kierunku zakażenia Shigella przeprowadził B.I. Khaimzon, T.S. Wiłkomirska. RSF ma dość wysoką czułość. Porównanie minimalnych stężeń Shigella w kale wychwyconym metodą bakteriologiczną (12,5 tys. bakterii w 1 ml) i RSF (3,0 - 6,2 tys.) wskazuje na wyższość RSF.

Ponieważ częstotliwość dodatnich wyników RNF jest bezpośrednio zależna od stopnia skażenia kału, zastosowanie metody daje największy efekt także w pierwszych dniach choroby oraz w cięższych postaciach procesu zakaźnego. Jednakże wyższa czułość metody decyduje o jej szczególnej przewadze w porównaniu z badaniem bakteriologicznym w późnych stadiach choroby, a także przy badaniu pacjentów z łagodnymi, bezobjawowymi i subklinicznymi postaciami zakażenia, przy niskim stężeniu patogenu w kale. RSF stosuje się również podczas badania pacjentów, którzy przyjmowali leki przeciwbakteryjne, ponieważ te ostatnie znacznie zmniejszają częstotliwość pozytywnych wyników metody badań bakteriologicznych, ale mają znacznie mniejszy wpływ na skuteczność RSF. Czułość RSF nie jest bezwzględna ze względu na istnienie opornych na fagi szczepów Shigella: odsetek szczepów opornych na fagi może się znacznie różnić – od 1% do 34,5%.

Wielką zaletą RSF jest jego wysoka specyficzność. Podczas badań osób zdrowych, a także chorych na choroby zakaźne o innej etiologii, pozytywne wyniki reakcji zaobserwowano jedynie w 1,5% przypadków. RSF jest cenną dodatkową metodą diagnozowania infekcji Shigella. Ale dziś ta metoda jest rzadko stosowana ze względu na jej złożoność techniczną. Inne metody są immunologiczne. Za ich pomocą rejestruje się specyficzną dla patogenu odpowiedź immunologiczną lub oznacza antygeny patogenu metodami immunologicznymi.

Ze względu na nasilenie specyficznych procesów alergii infekcyjnej w przebiegu zakażenia shigellozą, początkowo zastosowano alergologiczne metody diagnostyczne, do których zaliczano śródskórny test alergiczny z dyzenteryną (IDT). Lek „dysenteryna”, będący specyficznym alergenem Shigella pozbawionym substancji toksycznych, został uzyskany przez D.A. Tsuverkalov i został po raz pierwszy zastosowany w warunkach klinicznych podczas wykonywania testu śródskórnego przez L.K. Korowickiego w 1954 r. Według E.V. Golyusova i M.Z. Trokhimenko, w przypadku wcześniejszej ostrej czerwonki lub towarzyszących chorób alergicznych z objawami skórnymi (egzema, pokrzywka itp.). Znacznie częściej obserwuje się pozytywne wyniki VPD (paraalergia). Analiza wyników VPD w różnych okresach ostrej czerwonki wskazuje, że specyficzna alergia pojawia się już w pierwszych dniach choroby, osiąga maksymalne nasilenie między 7. – 15. dniem, a następnie stopniowo zanika. Pozytywne wyniki reakcji uzyskano podczas badania osób zdrowych w wieku od 16 do 60 lat w 15–20% przypadków, a u osób w wieku od 3 do 7 lat – w 12,5% przypadków. Jeszcze częściej niespecyficzne pozytywne wyniki VPD obserwowano u pacjentów z chorobami przewodu pokarmowego – w 20–36% przypadków. Wprowadzeniu alergenu towarzyszył rozwój reakcji miejscowej u 35,5 – 43,0% chorych na salmonellozę, u 74 – 87% chorych na zapalenie jelita grubego coli-0124. Poważnym argumentem przeciwko powszechnemu stosowaniu VPD w praktyce klinicznej był jego alergizujący wpływ na organizm. Biorąc pod uwagę powyższe, można powiedzieć, że metoda ta nie jest zbyt specyficzna. Test Tsuverkalova również nie jest specyficzny gatunkowo. Pozytywne wyniki reakcji występowały równie często w różnych postaciach etiologicznych czerwonki.

Oprócz VPD stosowano także inne reakcje diagnostyczne, o różnym stopniu ważności, uznawane za alergiczne, na przykład reakcję leukocytolizy alergenu (ALC), której istotą było specyficzne uszkodzenie lub całkowite zniszczenie aktywnie lub biernie uczulonych neutrofili po kontakt z odpowiednim antygenem. Reakcji tej nie można jednak przypisać wczesnym metodom diagnostycznym, gdyż maksymalna częstość wyników pozytywnych obserwowana była w 6-9 dniu choroby i wynosiła 69%. Zaproponowano również reakcję białaczki alergennej (ALE). Opiera się na zdolności leukocytów uwrażliwionego organizmu do aglomeracji pod wpływem kontaktu z alergenem homologicznym (dyzenteryną). Ze względu na brak dowodów na dokładny mechanizm takich badań i niedostateczną zgodność ich wyników z etiologią choroby, metody te po krótkim okresie stosowania w ZSRR nie upowszechniły się.

Wykrycie antygenów Shigella w organizmie jest diagnostycznie równoznaczne z wyizolowaniem patogenu. Główną przewagą metod wykrywania antygenów nad badaniami bakteriologicznymi, uzasadniającą ich zastosowanie kliniczne, jest możliwość wykrywania nie tylko żywych mikroorganizmów, ale także martwych, a nawet zniszczonych, co ma szczególne znaczenie podczas badania pacjentów w trakcie lub wkrótce po przebiegu terapia antybakteryjna.

Jedną z najlepszych metod ekspresowej diagnostyki czerwonki było badanie immunofluorescencyjne kału (metoda Coonsa). Istota metody polega na wykryciu Shigelli poprzez potraktowanie materiału badawczego surowicą zawierającą specyficzne przeciwciała znakowane fluorochromami. Połączenie znakowanych przeciwciał z homologicznymi antygenami towarzyszy specyficznemu świeceniu kompleksów, wykrywanemu w mikroskopie fluorescencyjnym. W praktyce stosuje się dwa główne warianty metody Koonsa: bezpośredni, w którym wykorzystuje się surowicę zawierającą znakowane przeciwciała przeciwko antygenom Shigella oraz pośredni (dwuetapowy), wykorzystujący surowicę nieznakowaną fluorochromem (lub frakcję globulinową antygenów Serum Shigella) w pierwszym etapie. W drugim etapie surowicę znakowaną fluorochromem przeciwstawia się globulinom surowicy anty-Shigella użytej w pierwszym etapie. Badania porównawcze wartości diagnostycznej dwóch wariantów metody immunofluorescencyjnej nie wykazały dużych różnic w ich swoistości i czułości. W praktyce klinicznej zastosowanie tej metody jest najskuteczniejsze podczas badania pacjentów we wczesnych stadiach choroby, a także w cięższych postaciach infekcji. Istotną wadą metody immunofluorescencyjnej jest jej brak swoistości. Najważniejszą przyczyną braku swoistości reakcji immunofluorescencyjnej jest powinowactwo antygenowe Enterobacteriaceae różnych rodzajów. Dlatego też metodę tę uważa się za wskazówkę w rozpoznawaniu zakażenia shigella.

Do wykrywania antygenów Shigella bez mikroskopii stosuje się różne reakcje. Metody te umożliwiają wykrycie antygenów patogenu w kale u 76,5–96,0% pacjentów z bakteriologicznie potwierdzoną czerwonką, co wskazuje na dość dużą czułość. Najbardziej wskazane jest stosowanie tych metod właśnie w późniejszych stadiach choroby. Większość autorów dość wysoko ocenia swoistość tych metod diagnostycznych. Jednakże F.M. Iwanow, który za pomocą RSC wykrywał antygeny shigella w kale, uzyskał pozytywne wyniki w 13,6% przypadków u osób zdrowych i pacjentów z infekcjami jelitowymi o innej etiologii. Zdaniem autora zastosowanie tej metody jest bardziej odpowiednie do identyfikacji specyficznych antygenów w moczu, gdyż w tym drugim przypadku częstość występowania nieswoistych reakcji dodatnich jest znacznie mniejsza. Zastosowanie różnych metod badawczych umożliwia wykrycie antygenów Shigella w moczu zdecydowanej większości pacjentów z czerwonką potwierdzoną bakteriologicznie. Dynamika wydalania antygenów w moczu ma pewne cechy szczególne - w niektórych przypadkach wykrycie substancji antygenowych jest możliwe już od pierwszych dni choroby, ale z największą częstotliwością i konsekwencją jest to możliwe w 10-15 dniu, a nawet później. Według B.A. Godovanny i wsp. odsetek pozytywnych wyników na obecność antygenów shigella w moczu (SAC) po 10. dniu choroby wynosi 77% (odpowiednik badania bakteriologicznego kału wynosi 47%). W związku z tym badanie moczu na obecność antygenów patogenu jest cenną metodą dodatkową w przypadku czerwonki, przede wszystkim w celu późniejszej i retrospektywnej diagnostyki.

Według N.M. Nurkina, jeśli immunoreagent będący przeciwciałem uzyskany zostanie z surowic poliklonalnych, możliwe są pozytywne wyniki wskazania, jeśli w próbce obecne są powiązane antygeny. Na przykład za pomocą diagnostyki erytrocytów z wysoce aktywnej surowicy przeciwko S.flexneri VI wykrywa się również antygen S.flexneri I-V, ponieważ Shigella obu podgatunków ma wspólny antygen gatunkowy. Antygeny Shigella można oznaczyć w okresie choroby zarówno w surowicy krwi, jak i wydzielinach.

Lee Won Ho i in. Wykazano, że częstość wykrywania antygenów Shigella oraz ich stężenie we krwi i moczu są wyższe w pierwszych dniach choroby, a stężenie wykrytych antygenów jest wyższe w umiarkowanych przypadkach choroby niż w łagodnych.

CM. Omirbayeva zaproponowała metodę oznaczania antygenu Shigella, polegającą na zastosowaniu sformalizowanych erytrocytów jako sorbentu dla antygenów z badanego ekstraktu kału, a następnie aglutynacji z surowicami odpornościowymi. Ocena specyfiki tej metody wymaga naszym zdaniem dodatkowych badań, gdyż ekstrakty kału zawierają znaczne ilości antygenów innych bakterii, które nie są przyczyną tej choroby jelit.

Wielu badaczy proponuje test immunoenzymatyczny jako metodę szybkiej diagnostyki ostrej czerwonki, która zdaniem wielu autorów jest uważana za wysoce czułą i wysoce swoistą. W tym przypadku najwyższy poziom antygenu wykrywa się w dniach 1-4 choroby. Pomimo oczywistych zalet testu ELISA, do których zalicza się wysoką czułość, możliwość ścisłego instrumentalnego rozliczania ilościowego oraz łatwość konfiguracji reakcji, powszechne stosowanie tej metody jest ograniczone ze względu na konieczność stosowania specjalnego sprzętu.

W celu zwiększenia czułości i swoistości różnych metod serologicznych wykrywania antygenów zaleca się stosowanie przeciwciał monoklonalnych, fragmentów immunoglobulin, przeciwciał syntetycznych, barwienie srebrem LPS i inne ulepszenia technologiczne.

Często nie jest możliwe wykrycie antygenu czynnika zakaźnego, nawet przy zastosowaniu bardzo czułych reakcji do wykrywania antygenów patogenu w biologicznych substratach organizmu, ponieważ znaczna część substancji antygenowych najwyraźniej znajduje się w próbce biologicznej w postaci kompleksów immunologicznych w ciele. Badając pacjentów z bakteriologicznie potwierdzoną ostrą czerwonką, według niektórych danych pozytywne wyniki oznaczania antygenu metodą RSC odnotowano jedynie w 18% przypadków.

TELEWIZJA. Remneva i in. Proponują wykorzystanie ultradźwięków do rozbicia kompleksów przeciwciał z cząsteczkami patogenu, a następnie określenia antygenu patogenu w RSC na zimno. Metodę tę wykorzystano do diagnostyki czerwonki, a materiałem badawczym były próbki moczu pacjentów z ostrymi infekcjami jelitowymi.

Stosowanie reakcji strącania do wykrywania antygenu w ostrej czerwonce nie ma uzasadnienia ze względu na jej małą czułość i swoistość. Uważamy, że swoistość wszelkich metod oznaczania antygenów Shigella można znacząco zwiększyć stosując przeciwciała monoklonalne przeciwko Shigella.

Reakcja koaglutynacji jest również jedną z metod szybkiej diagnostyki szigelozy, a także antygenów patogenów wielu innych infekcji. W przypadku shigellozy antygeny patogenu można oznaczać od pierwszych dni choroby przez cały okres ostry, a także w ciągu 1 - 2 tygodni po ustaniu wydalania bakterii. Zaletami reakcji koaglutynacji są łatwość wykonania zestawów diagnostycznych, ustawienia reakcji, opłacalność, szybkość, czułość i wysoka swoistość.

W diagnostyce mającej na celu oznaczenie antygenów Shigella od samego początku choroby, zdaniem wielu autorów, najskuteczniejsze jest badanie kału pacjentów. W miarę postępu choroby zdolność wykrywania antygenów Shigella w moczu i ślinie maleje, choć w kale wykrywa się je niemal z taką samą częstotliwością jak na początku choroby. Należy wziąć pod uwagę, że w ciągu pierwszych 3-4 dni choroby nieco skuteczniejsze jest badanie kału na obecność antygenu w RPGA. W połowie choroby RPHA i RNAb są równie skuteczne, a od 7. dnia RNAb jest skuteczniejsze w poszukiwaniu antygenu Shigella. Cechy te wynikają ze stopniowego niszczenia komórek Shigella i ich antygenów w jelitach pacjenta w trakcie choroby. Antygeny Shigella wydalane z moczem są stosunkowo mniejsze niż antygeny w kale. Dlatego wskazane jest badanie moczu w RNAt. W moczu kobiet, w przeciwieństwie do moczu mężczyzn, ze względu na prawdopodobne zanieczyszczenie kałem, równie często wykrywa się antygeny Shigella za pomocą RPHA i RNAb.

Chociaż antygen jest wykrywany znacznie częściej (94,5 - 100%) w próbkach kału, z których można wyizolować Shigella, niż w tych próbkach, z których Shigella nie jest izolowana (61,8 - 75,8%), z równoległym badaniem bakteriologicznym i serologicznym (dla antygenu) W badaniu próbek kału pacjentów chorych na czerwonkę na ogół Shigella wyizolowano jedynie z 28,2–40,0% próbek, a antygen wykryto w 65,9–91,5% próbek. Należy podkreślić, że specyficzność gatunkowa wykrytego antygenu zawsze odpowiada specyficzności przeciwciał surowicy, których miano wzrasta możliwie najbardziej dynamicznie. Koncentrując się na warunkowym mianie diagnostycznym przeciwciał, można czasami zaobserwować rozbieżności w swoistości takich przeciwciał i wykrywanego antygenu. Rozbieżność ta wynika z niewystarczającej wiarygodności diagnostycznej pojedynczego oznaczenia aktywności przeciwciał w surowicy. W takim przypadku rozpoznanie etiologiczne należy postawić na podstawie swoistości wykrytego antygenu.

Metoda PCR, mająca na celu bezpośrednią identyfikację oznak patogenu, jest bliska metodom oznaczania antygenów. Pozwala określić DNA patogenu i opiera się na zasadzie naturalnej replikacji DNA, obejmującej rozwinięcie podwójnej helisy DNA, rozbieżność nici DNA i komplementarne dodanie obu. Replikacja DNA nie może rozpocząć się w żadnym momencie, a jedynie w określonych blokach startowych – krótkich odcinkach dwuniciowych. Istota tej metody polega na tym, że zaznaczając takimi blokami odcinek DNA specyficzny tylko dla danego gatunku (ale nie dla innego gatunku), można wielokrotnie odtworzyć (amplifikować) ten konkretny odcinek. Systemy badawcze oparte na zasadzie amplifikacji DNA pozwalają w większości przypadków wykryć bakterie i wirusy chorobotwórcze dla człowieka, nawet w przypadkach, gdy ich wykrycie innymi metodami nie jest możliwe. Specyfika systemów testowych PCR (przy właściwym doborze starterów specyficznych dla taksonu, wykluczeniu wyników fałszywie dodatnich i braku inhibitorów amplifikacji w testach biologicznych) w zasadzie pozwala uniknąć problemów związanych z antygenami reagującymi krzyżowo, zapewniając tym samym bardzo wysoka specyficzność. Oznaczanie można przeprowadzić bezpośrednio na materiale klinicznym zawierającym żywy patogen. Jednak pomimo tego, że czułość PCR może osiągnąć matematycznie możliwą granicę (wykrycie 1 kopii matrycy DNA), metoda ta nie jest stosowana w praktyce diagnozowania shigellozy ze względu na jej stosunkowo wysoki koszt.

W powszechnej praktyce klinicznej wśród metod badań serologicznych najbardziej rozpowszechnione są metody polegające na oznaczaniu poziomu i dynamiki przeciwciał w surowicy przeciwko podejrzewanemu czynnikowi sprawczemu choroby.

Niektórzy autorzy określili przeciwciała przeciwko Shigella w koprofiltratach. Koproprzeciwciała pojawiają się znacznie wcześniej niż przeciwciała w surowicy. Aktywność przeciwciał osiąga maksimum w dniach 9–12, a w dniach 20–25 zwykle nie są one wykrywane. R. Laplane i wsp. sugerują, że jest to spowodowane zniszczeniem przeciwciał w jelicie pod wpływem enzymów proteolitycznych. U zdrowych osób nie można wykryć koproprzeciwciał.

W. Barksdale i in., T.N. Nikołajewa i in. donoszą o wzroście efektywności rozszyfrowania rozpoznania i identyfikacji rekonwalescentów poprzez jednoczesne oznaczanie surowicy i koproprzeciwciał.

Wykrycie aglutynin w mianach diagnostycznych jest możliwe w przypadku czerwonki potwierdzonej bakteriologicznie jedynie u 23,3% chorych. Ograniczona czułość RZS objawia się także niewystarczająco wysokimi mianami aglutynin wykrywanych za jego pomocą. Istnieją dowody wskazujące na nierówną czułość RZS w różnych postaciach etiologicznych zakażenia szigelozą. Według A.A. Klyuharevy, przeciwciała w mianie 1:200 i wyższym wykrywa się za pomocą RZS jedynie u 8,3% chorych na czerwonkę Flexnera, a jeszcze rzadziej na czerwonkę Sonne’a. Pozytywne wyniki reakcji występują nie tylko częściej, ale także w wyższych mianach obserwowanych w przypadku czerwonki Flexner I-V i Flexner VI niż w przypadku czerwonki Sonne'a. Dodatnie wyniki RZS pojawiają się od końca pierwszego tygodnia choroby i najczęściej odnotowuje się je w drugim lub trzecim tygodniu. Pierwsze 10 dni choroby stanowi 39,6% wszystkich pozytywnych wyników reakcji. Według A.F. Podlevsky i wsp. aglutyniny w mianach diagnostycznych wykrywa się w pierwszym tygodniu choroby u 19% pacjentów, w drugim tygodniu - u 25%, a w trzecim - u 33% pacjentów.

Częstotliwość dodatnich wyników RZS i poziom miana przeciwciał wykrywanych za jego pomocą są bezpośrednio zależne od ciężkości zakażenia Shigella. Według V.P. Zubarevy, stosowanie terapii przeciwbakteryjnej nie zmniejsza częstości pozytywnych wyników RZS, jednak gdy antybiotyki są przepisywane w ciągu pierwszych 3 dni choroby, aglutyniny są wykrywane w niższych mianach.

RZS ma ograniczoną swoistość. W badaniu osób zdrowych dodatni wynik RZS uzyskano w 12,7% przypadków, a reakcje grupowe w 11,3% przypadków. Ze względu na pokrewieństwo antygenowe bakterii Flexner I-V i Flexner VI, szczególnie często obserwuje się reakcje krzyżowe w odpowiednich postaciach etiologicznych zakażenia shigella.

Wraz z pojawieniem się bardziej zaawansowanych metod serodiagnostyki zakażenia Shigella, RZS stopniowo traciło na znaczeniu. Wartość diagnostyczna reakcji aglutynacji („czerwonkowej reakcji Vidala”) (RZS) w przypadku czerwonki jest przez różnych badaczy oceniana niejednoznacznie, jednak wyniki prac większości autorów wskazują na ograniczoną czułość i swoistość tej metody.

Najczęściej do oznaczenia przeciwciał wykorzystuje się pośrednią (bierną) reakcję hemaglutynacji (IPHA). Szczegółowe badania wartości diagnostycznej biernej reakcji hemaglutynacji (RPHA) w przypadku zakażenia Shigella przeprowadził A.V. Lullu, L.M. Shmuter, T.V. Vlokh i wielu innych badaczy. Ich wyniki pozwalają stwierdzić, że RPGA jest jedną z najskuteczniejszych metod serologicznej diagnostyki czerwonki, choć nie jest pozbawiona pewnych wspólnych wad, właściwych metodom tej grupy.

Badanie porównawcze wrażliwości RPGA na czerwonkę i reakcji aglutynacji wskazuje na dużą wyższość pierwszej metody. Według A.V. Lullu średnie miano RPHA w tej chorobie przekracza średnie miano RA 15 razy (w szczytowym okresie choroby 19-21 razy), przeciwciała na wysokim poziomie (1:320 - RPHA) są wykrywane, gdy stosowany 4,5 razy częściej niż w mianie (1:160 przy przeprowadzaniu reakcji aglutynacji). W przypadku potwierdzonej bakteriologicznie ostrej czerwonki, dodatnią reakcję RPHA w mianach diagnostycznych stwierdza się podczas badania 53-80% pacjentów.

Hemaglutyniny wykrywa się od końca pierwszego tygodnia choroby, częstotliwość wykrywania i miano przeciwciał wzrasta, osiągając maksimum pod koniec drugiego i trzeciego tygodnia, po czym ich miano stopniowo maleje.

Istnieje wyraźna zależność częstości dodatnich wyników RPGA i mian hemaglutyniny od ciężkości i charakteru przebiegu zakażenia Shigella. Odpowiednie badania wykazały, że w przypadku wymazanych i subklinicznych postaci zakażenia pozytywne wyniki RPGA uzyskiwano rzadziej niż w przypadku ostrej, klinicznie istotnej czerwonki (odpowiednio 52,9 i 65,0%), podczas gdy tylko 4 osoby odpowiedziały w mianie 1:200 - 1:400 2% surowic (w postaci klinicznie wyraźnej – 31,2%) oraz w postaciach przedłużonych i przewlekłych, dodatnie wyniki RPGA odnotowano u 40,8% pacjentów, w tym w mianie 1:200 – tylko 2,0%. Istnieją również doniesienia o różnej czułości RPHA w niektórych etiologicznych postaciach zakażenia szigelozą. Według L.M. Schmutera najwyższe miana hemaglutynin obserwuje się w czerwonce Sonne’a, a znacznie niższe w czerwonce Flexner I-V i Flexner VI. Leczenie antybakteryjne rozpoczęte we wczesnych stadiach choroby, poprzez skrócenie czasu trwania i nasilenia podrażnienia antygenowego, może spowodować pojawienie się hemaglutynin w surowicy krwi w niższych stężeniach.

Podobnie jak reakcja aglutynacji, RPGA nie zawsze pozwala dokładnie rozpoznać etiologiczną postać zakażenia shigella, co wiąże się z możliwością wystąpienia reakcji grupowych. Reakcje krzyżowe obserwuje się głównie w przypadku czerwonki typu Flexner - pomiędzy czerwonką Flexner I-V i Flexner VI. U wielu pacjentów humoralna odpowiedź immunologiczna jest słaba. Nie można wykluczyć możliwości aglutynacji krzyżowej ze względu na wspólne antygeny. Do zalet tej metody należy jednak prostota reakcji, możliwość szybkiego uzyskania wyników i stosunkowo wysoka skuteczność diagnostyczna. Istotną wadą tej metody jest to, że rozpoznanie można postawić dopiero w 5. dniu choroby, maksymalne diagnostyczne miano przeciwciał można określić do 3. tygodnia choroby, dlatego też metodę można zaliczyć do „retrospektywnej”.

W diagnostyce czerwonki proponuje się także oznaczenie poziomu swoistych krążących kompleksów immunologicznych reprezentowanych przez antygen O S. sonnei w połączeniu ze specyficznym przeciwciałem, stosując pośrednią „wersję kanapkową” immunosorbentu enzymatycznego oznaczenie ze względu na dużą czułość i swoistość, zaleca się jednak stosowanie tej metody dopiero w 5-8 dniu choroby.

U pacjentów z czerwonką od samego początku choroby wykrywa się specyficzny wzrost aktywności bakteriofiksującej krwi ze względu na aktywność wiązania antygenu przez erytrocyty. W ciągu pierwszych 5 dni ACI określenie aktywności erytrocytów w wiązaniu antygenu pozwala w 85–90% przypadków ustalić etiologię choroby. Mechanizm tego zjawiska nie jest dobrze poznany. Można przypuszczać, że jego podstawą jest wiązanie kompleksu immunologicznego antygen-przeciwciało przez erytrocyty poprzez ich receptory C3b (u naczelnych, w tym ludzi) lub receptory Fcγ (u innych ssaków).

Wśród stosunkowo nowych metod rejestracji specyficznej odpowiedzi immunologicznej na poziomie komórkowym uwagę zwraca oznaczenie limfocytów wiążących antygen (ABL), które reagują z konkretnym, istotnym taksonomicznie antygenem. Wykrywanie ASL przeprowadza się różnymi metodami - sparowaną aglutynacją limfocytów z antygenem, immunofluorescencją, RIA, adsorpcją limfocytów na kolumnach zawierających antygen, adhezją komórek jednojądrzastych na szklanych kapilarach, pośrednią reakcją tworzenia rozety (IRRO). Należy zauważyć, że tak czułe metody rejestracji ASL, jak ELISA i RIA, adsorpcja limfocytów na kolumnach zawierających antygen, są technicznie stosunkowo złożone i nie zawsze są dostępne do powszechnego stosowania. Prace wielu autorów wykazały wysoką czułość i swoistość RNRO w wykrywaniu ASL w różnych chorobach. Wielu badaczy zidentyfikowało ścisły związek między zawartością ASL we krwi pacjentów z różnymi patologiami a postacią, ciężkością i okresem choroby, jej przejściem do postaci przewlekłej lub przewlekłej.

Niektórzy autorzy uważają, że poprzez określenie poziomu ASL w dynamice choroby można ocenić skuteczność terapii. Większość autorów uważa, że ​​w przypadku powodzenia zmniejsza się ilość ASL, a w przypadku niewystarczającej skuteczności leczenia następuje wzrost lub stabilizacja tego wskaźnika. Donoszono, że oznaczenie ASL umożliwia ilościowe określenie uczulenia na antygeny tkankowe i bakteryjne, a także na antybiotyki, co ma ważną wartość diagnostyczną. Metodę ASL w diagnostyce czerwonki stosuje się w ograniczonym zakresie.

Możliwość wczesnego wykrycia ASL, już w pierwszych dniach po zakażeniu, jest bardzo ważna dla wczesnej diagnozy i szybkiego rozpoczęcia leczenia, co jest niezbędne dla klinicysty.

Zatem z danych przedstawionych w przeglądzie wynika, że ​​wobec powszechnego występowania czerwonki, braku czułości i późnego pojawiania się pozytywnych wyników wielu metod diagnostycznych, wskazane jest rozwijanie potencjału diagnostycznego w zakresie wykrywania tego zakażenia. Dane uzyskane w wielu chorobach zakaźnych na temat wysokiej skuteczności metody ASL i wczesnego pojawienia się jej pozytywnego wyniku determinują perspektywy badania i stosowania tej metody w leczeniu shigellozy.

Bibliografia

1 Juszczuk N.D., Brodow L.E. Diagnostyka różnicowa i leczenie ostrych infekcji jelitowych // Ros. I. gastroenterol., hepatol., koloproktol. – 2000. – 10, nr 5. – s. 13 – 16. – Rus. – ISSN 1382-4376. – RU.

2 Shuvalova E.P., Zmushko E.I. Diagnostyka syndromiczna chorób zakaźnych. // Podręcznik. – S-P.: Peter, 2001. – s. 138-141.

3 Karalnik B.V., Amireev S.A., Syzdykov M.S. Zasady i możliwości laboratoryjnych metod diagnostycznych oraz interpretacja ich wyników w pracy epidemiologa // Metoda. Zalecana - Ałmaty. – 1997. – 21 s.

4 Karalnik B.V. Diagnostyka serologiczna bakteryjnych infekcji jelitowych. // Metoda. zalecenia. – Ałmaty, 1973. – 3-20 s.

5 5. Nurkina N.M. Porównawcza skuteczność metod serologicznej diagnostyki czerwonki z wykorzystaniem uwrażliwionych erytrocytów: Streszczenie pracy dyplomowej. dis. Doktorat – Ałmaty, 1984. – 22 s.

6 Karalnik B.V., Nurkina N.M. Kompleksowa diagnostyka serologiczna czerwonki. // Metoda. zalecenia. – Ałmaty, 1983. – 24 s.

7 Erkinbekova B.K. Metoda oznaczania antygenów Shigella w badaniach sanitarno-epidemiologicznych czerwonki: Streszczenie autorskie. diss. ...kandydat nauk medycznych. – Ałmaty, 1995. – 18 s.

8 Nikitin V.M., Georgitsa F.I., Plugaru S.V. i inne Przyspieszone metody diagnozowania chorób zakaźnych. // Kiszyniów. - 1987. - 106 s.

9 Neverov V.A. Strategia i taktyka diagnostyki i leczenia ostrych infekcji jelitowych. // Petersburg – 1996. – 12 s.

10 Worobiew A.A. Mikrobiologia medyczna, wirusologia i immunologia. // M.- 2004.- s. 7-8.

11 Iwanow K.S., Iwanow A.I. Diagnostyka ostrych infekcji biegunkowych // Klin. Miód. – 1992. – nr 7-8 – s. 64-69.

12 Ciudin L., Pencu E., Mihai, I. i in. Identyfikacja serologiczna szczepów Shigella flex neri poprzez reakcję koaglutynacji // Roum. Łuk. Mikrobiol.Immunol. –1995/ — Tom/ 54(4). — s. 295 — 311.

13 Lindberg A.A., Cam P.D., Chan N. i in. Szigelloza w Wietnamie: badania seropeptydowe z użyciem antygenów lipopolisacharydowych w testach odporności enzymatycznej // Rev. Infekować. Dis. – 1991. – Cz. 13, dodatek 4. - s. 231 - 237.

14 Sloper S. Shigella. // W: Enterobacteriaceae-infekcja. Lipsk.- 1968.- R. 375–441.

15 Jacobs J., Rudensky B., Dresner J. i in. Porównanie czterech testów laboratoryjnych do diagnostyki biegunki wywołanej Clostridium difficile // Eur. J. Clin Mikrobiol. Infect.Dis. – 1996. – Cz. 15 ust. 7. – s. 561-566.

16 Klyucharev A.A., Poleshko D.V., Vershenya M.I. Cechy kliniczne i epidemiologiczne przebiegu czerwonki w ostatnich latach. // Opieka zdrowotna Białorusi. – 1973. – Nr 11.- s. 54-56.

17 Gusarskaya I.L. Cechy przebiegu klinicznego czerwonki Sonne’a na obecnym etapie i niektóre zagadnienia jej zapobiegania. // W książce: Problematyka chorób zakaźnych. - Wołogda. - 1970. -S. 23-27.

18 Shitov I.A., Trinitatskaya M.I. Czas wydalania bakterii u pacjentów z ostrą czerwonką. // W książce: Infekcje jelitowe - Część 2. - L. 1972. - s. 161-163.

19 Avdeeva T.A. Ilościowe badania mikrobiologiczne czerwonki (wyniki opracowania i zastosowania metody badania klinicznych, mikrobiologicznych i epidemiologicznych wzorców czerwonki). Streszczenie autora. dis. dla aplikacji o pracę naukowiec krok. dr med. Nauka. L., 1964, 28 s.

20 Tillet H., Thomas M. Kultura kału w diagnostyce czerwonki Sonne’a: statystyczna metoda szacowania rzeczywistego współczynnika izolacji. //Międzynarodowe. J.Epidemiol.- 1974.- tom 3.- R. 177-181.

21 Khaimzon B.I. Reakcja rosnącego miana fagów w diagnostyce ostrej czerwonki u dorosłych. Streszczenie autora. dis. dla aplikacji o pracę naukowiec krok. Móc. Nauki medyczne Woroneż, 1965, 16 s.

22 Wiłkomirskaja T.S. Materiały dotyczące badań czułości i swoistości reakcji wzrostu miana fagów (RFT) w diagnostyce czerwonki. // W książce: Zagadnienia immunologii chorób zakaźnych i alergicznych. Ufa.- 1970.- s. 48-49.

23 Iwanow F.M. Wartość porównawcza metod inokulacji, wzrostu titrafagów i wykrywania substancji antygenowych na różnych etapach procesu czerwonki. Streszczenie autora. dis. dla aplikacji o pracę naukowiec krok. Móc. Nauki medyczne Orenburg, 1963, 10 s.

24 Wiłkomirskaja T.S. O znaczeniu klinicznym i epidemiologicznym reakcji wzrostu miana fagów (RFT) w diagnostyce czerwonki w przebiegu Ufa. Streszczenie autora. dis. dla aplikacji o pracę naukowiec krok. Móc. Miód. Nauka. Ufa, 1971, 24 s.

25 Mazurin N.D., Rozina-Itskina Ts.S. Reakcja rosnącego miana fagów w diagnostyce czerwonki. // JMEI. - 1963. - nr 1. - s. 113-116.

26 Golyusova E.V., Trokhimenko M.Z. O znaczeniu testu Tsuverkalova w diagnostyce ostrej czerwonki u dzieci. // Zakażenia jelitowe (Kijów) – 1972. – zeszyt. 5. - s. 97-99.

27 Fradkin V.A., Lodinova L.M. Zastosowanie alergenów w diagnostyce przewlekłych infekcji jelitowych. // W książce: Nosicielstwo bakterii i przewlekłe formy chorób zakaźnych. - Część 2.- M.-1975.- s. 213-215.

28 Łukaszewicz K.K. Alergiczna metoda diagnozowania czerwonki. // W książce: Niektóre zagadnienia kliniczne i alergie w patologii zakaźnej Kujbyszew – 1970. – s. 41-43.

29 Czeczelnicki V.M. Znaczenie reakcji Tsuverkalova w diagnostyce ostrej czerwonki. // W książce: Immunologia i infekcje jelitowe Woroneż - 1970. - s. 110-114.

30 Bogdanow I.L. Alergia w patogenezie, obrazie klinicznym i terapii chorób zakaźnych. // M. - 1974. - 245 s.

31 Gorczakowa G.A. Dysenteryna (lek do śródskórnego badania w celu rozpoznania czerwonki). Streszczenie autora. dis. dla aplikacji o pracę naukowiec krok. Dr. Nauki medyczne Odessa, 1969, 19 s.

32 Lyubitskaya N.A., Polyak A.I. Immunodiagnostyka czerwonki u dzieci //VI Ogólnounijna. konf. według klinicznych biochemia, morfologia i infekcje immunologiczne. bol.: Streszczenia raportów. – Ryga, 1983. – s. 106-107.

33 Furman A.A. Badanie porównawcze niektórych przyspieszonych metod diagnostyki laboratoryjnej czerwonki i zapalenia jelita grubego. Streszczenie autora. dis. Nasojsk. naukowiec krok. Móc. Miód. Nauka. Kijów, 1970, 19 s.

34 Michajłow I.F., Pers I.F. Wykrywanie powiązań antygenowych pomiędzy bakteriami z grupy jelitowej za pomocą przeciwciał fluorescencyjnych. JMEI, 1975, nr 5, s. 97-103.

35 Shmuter L.M. Reakcje hemaglutynacji pośredniej i neutralizacji przeciwciał w diagnostyce czerwonki. Streszczenie autora. dis. dla aplikacji o pracę naukowiec kanał schodkowy Miód. Nauka. Charków, 1968, 19 s.

36 Evdokimova T.V., Podlevsky A.F., Yafaev R.Kh. Podobieństwa kliniczne i laboratoryjne w ostrej czerwonce u dorosłych. – JMEI, 1974, nr 6, s. 82-85.

37 Mohylew V.E. Bierna hemaglutynacja w czerwonce. Streszczenie pracy dyplomowej. dla aplikacji o pracę naukowiec krok. Móc. Miód. Nauka. Kujbyszew, 1968, 20 s.

38 Rybakova N.A. Zastosowanie biernej reakcji hamowania hemaglutynacji w diagnostyce czerwonki Sonne’a w praktycznym laboratorium. - Laboratorium. biznesowy, 1975, nr 3, s. 168-170.

39 Iwanow F.M. Wartość porównawcza metod inokulacji, wzrostu titrafagów i wykrywania substancji antygenowych na różnych etapach procesu czerwonki. Streszczenie autora. dis. dla aplikacji o pracę naukowiec krok. Móc. Miód. Nauka. Orenburg, 1963, 10 s.

40 Godovanny B.A., Litinsky Yu.I., Bodisko V.P. i inne.Ilościowe oznaczanie antygenu Shigella Sonne w moczu pacjentów i nosicieli bakterii. - Laboratorium. biznesowy, 1974, nr 6, s. 360-363.

41 Kashkin G.S. Badanie dynamiki antygenów drobnoustrojów we krwi i moczu w ostrej czerwonce. – W książce: Problematyka chorób zakaźnych. Wołogda, 1970, s. 47-50.

42 Nurkina N.M. Porównawcza skuteczność metod serologicznej diagnostyki czerwonki z wykorzystaniem uwrażliwionych erytrocytów: Streszczenie pracy dyplomowej. dis. Doktorat – Ałmaty, 1984. – 22 s.

43 Lee Van Ho., Rubtsov I.V., Tregub A.V., Remneva T.V. Porównawcza wartość diagnostyczna niektórych metod identyfikacji antygenów czerwonki w substratach organizmu pacjenta. // Zh.mikrobiol. – 1989. – nr 1. – s. 57-61.

45 Sakal N.N. Zastosowanie i ocena skuteczności testów immunoenzymatycznych we wczesnej diagnostyce i prognozowaniu przebiegu czerwonki Sonne’a: Streszczenie pracy dyplomowej. diss. ...cad. Miód. Nauka. – Petersburg, 1993. – 21 s.

46 Rubtsov I.V., Pimenova G.N., Kulakova V.N. O statystycznej ocenie danych klinicznych i laboratoryjnych testu ELISA // Materiały jubileuszowej pracy naukowo-praktycznej. konferencje, dedykowane 80. rocznica powstania Kliniki Chorób Zakaźnych MMA im. I.M. Sechenov (22-23 maja 2003). - M.: MMA im. I.M. Sieczenow. - 2003. - s. 152-153.

47 Downes F.P., Green J.K. i in. Opracowanie i ocena testu immunoenzymatycznego do wykrywania Shiga – jak toksyna I i Shiga – jak toksyna II // J. Clin. Mikrobiol. – 1989. – V. 27, nr 6. – s. 1292-1297.

48 Barbans P.S., Pantyukhina A.N. Metody otrzymywania i monitorowania fluorescencyjnych Fab – fragmentów przeciwciał przeciwko białkom surowicy osób chorych na dur brzuszny // Journal of microbiol., epidemiol. i immunobiol. – 1984. – nr 2. – s. 102-105.

49 Zastosowanie syntetycznych antygenów w diagnostyce chorób zakaźnych //Techn.ser/WHO. – 1989 r. – nr 784. – s. 1-74.

50 Ekwall E., Norberg T., Swensons S.B. i in. specyficzna identyfikacja antygenu O3 salmonelli serogrupy E metodą immunofluorescencji i koaglutynacji z surowicą odpornościową zidentyfikowaną 1 za pomocą syntetycznego trisacharydu – glikokoniugatu albumizującego surowicę bydlęcą // J. Clin.Microb. – 1994. – 19, nr 5. – s. 699-702.

51 Lee Kuo-Ka, Ellis A.E. Szybkie i czułe barwienie srebrno-lipopolisacharydowe przy użyciu Phast System w szybkiej poziomej elektroforezie w żelu poliakryloamidowym //Elektroforeza. – 1989. – V. 10, nr 10. – s. 729-731.

52 Tempieva T.V., Yuditskaya N.M., Litinsky Yu.I., Lee Vam Ho. Ultradźwiękowy rozpad kompleksów immunologicznych do wykrywania antygenów Shigella w moczu pacjentów chorych na czerwonkę // Lab. sprawa. – 1988. – nr 9. – s. 64-66.

53 Chaika N.A. Badanie infekcji jelitowych i ich patogenów z wykorzystaniem nowoczesnych metod immunologicznych // Ostre infekcje jelitowe. – Ł.: Leningr. Instytut Badawczy Epidemiologii i mikro. – 1987 r. – wydanie. II. – str. 3-8.

54 Khazenson L.B., Chaika N.A. Immunologiczne podstawy diagnostyki i analizy epidemiologicznej zakażeń jelitowych. – M.: Medycyna. –1987. – 112 s.

55 Kashkin G.S. Badanie dynamiki antygenów drobnoustrojów we krwi i moczu dzieci chorych na ostrą czerwonkę. // W książce: Problematyka chorób zakaźnych. - Wołogda. – 1970.- s. 47-50.

56 Godovanny B.A., Litinsky Yu.I., Bodisko V.P. Ilościowe oznaczanie antygenu Shigella Sonne w moczu pacjentów i nosicieli bakterii. // Laboratorium. sprawa. – 1970. – nr 6. – s. 360-363.

57 Rybakova N.A., Rybakov D.A. Zastosowanie RNGA i RNAt w badaniach epidemiologicznych chorób o etiologii czerwonkowej. – Materiały Leningradzkiego Instytutu Epidemiologicznego. i mikrobiolog. nazwany na cześć Pasteura. -T. 56. – L., 1981. – s. 58-61.

58 Wasilijewa A.V. Ocena porównawcza różnych metod diagnostyki serologicznej czerwonki Sonne’a. // Infekcje jelitowe. – 1972. – Wydanie. nr 5 – s. 129-132.

59 Dubinina I.G., Shcherbo S.N., Makarov V.B. Metody reakcji łańcuchowej polimerazy w praktyce laboratoryjnej. // Kliniczna diagnostyka laboratoryjna. – 1997, nr 7. – str. 4 – 6.

60 Turkadze K.A., Podkolzin T.A., Kokoreva L.N. i inne.Porównawcza skuteczność zastosowania PCR i metody bakteriologicznej w diagnostyce salmonellozy i shigellozy // Materiały jubileuszowej pracy naukowo-praktycznej. konferencje, dedykowane 80. rocznica powstania Kliniki Chorób Zakaźnych MMA im. I.M. Sechenov (22-23 maja 2003). - M.: MMA im. I.M. Sieczenow. - 2003. - s. 172-173.

61 Akhtamov M.A., Achmedow A.A. Badanie porównawcze skuteczności niektórych reakcji serologicznych w diagnostyce laboratoryjnej ostrej czerwonki // Med. magazyn Uzbekistanu. – 1984. -№1. – s. 29-31.

62 Borysów V.A. W stronę oceny porównawczej niektórych metod serologicznych w diagnostyce czerwonki. - Laboratorium. biznesowy, 1972, nr 9, s. 564-566.

63 Laplane R., Be, gue P., Omanga V. Anticorps seriques et copro-anticorps dansles infekcji bacteriannes trawienne de l, enfant. // Byk. Acad. nat. med. – 1975. – Cz. 159. - nr 7. - s. 596-600.

64 Barksdale W., Ghoda A. Przeciwciała aglutynujące w surowicy i kale.// J. Immunol. – 1951. – Cz. 66. – s. 395 – 401.

65 Nikolaeva T.A., Kukain E.M., Khazenson L.B. Immunochemiczny charakter przeciwciał przeciwko kopro i surowicy u pacjentów z czerwonką Sonne'a i innymi ostrymi chorobami. - Tez. raport Do naukowo-praktycznego konf., dedykowany 50. rocznica LeningraduNIIEM nazwany imieniem. Pasteura. L., 1973, s. 2. 53-54.

66 Lullu AV Zastosowanie reakcji hemaglutynacji pośredniej do diagnostyki i badań immunologii ostrej czerwonki. // Streszczenie autora. dis. dla aplikacji o pracę naukowiec krok. Móc. Miód. Nauka. - Tartu. - 1963. - 10 s.

67 Klyucharev A.A. Materiały do ​​badań czerwonki na Białorusi. Poleshko D.V., Vershenya M.I. Cechy kliniczne i epidemiologiczne przebiegu czerwonki w ostatnich latach. // Streszczenie autora. dis. dla aplikacji o pracę stopień naukowy Dr. Miód. Nauka. - Kowno. - 1970. - 32 s.

68 Podlevsky A.F., Tselinskaya N.M., Zhuravleva L.V., Buchel N.E. Pośrednia reakcja hemaglutynacji w czerwonce u pacjentów w różnym wieku. // W książce: Zagadnienia epidemiologii i profilaktyki zakażeń jelitowych i naturalnych ogniskowych. L., 1971, s. 93-99.

69 Zaitlenok M.A., Eremina A.M., Subbotina Yu.L. Badania serologiczne w ostrych infekcjach jelitowych nie potwierdzone bakteriologicznie // Immunologia i immunopatologia. – Woroneż, 1983. – s. 35-37.

70 Borysow V.A., Orlik N.S., Kirilyuk M.A. Odpowiedź immunologiczna u pacjentów z czerwonką z przedłużonym wydalaniem Shigella. // Ogólnounijna. konf. biochemia kliniczna, morfologia i immunologia chorób zakaźnych. Abstrakcyjny. raport - Ryga - 1977. - s. 377-378.

71 Chilingaryan A.V. Wyniki równoległego zastosowania modelu płucnego, reakcji hemaglutynacji pośredniej i reakcji aglutynacji do wykrywania przeciwciał przeciw czerwonce we krwi osób zdrowych. // W książce: Ostre infekcje jelitowe. Czerwonka, escherichioza, salmonelloza. – L. – 1970. – s. 93-101.

72 Patton C.M., Gangorosa E.J., Weissman J.B. i in. Wartość diagnostyczna hemaglutynacji pośredniej w seroepidemiologii zakażeń Shigella. // J. z Clin. Mikrob. – 1976. – Cz. – 23. – s. 143-148.

73 Martinez J. Badania epidemiologiczne czerwonki bakteryjnej. // Bol. ofic. sanit.panamer. – 1973. – Cz. 75. – s. 213-224.

74 Musabaev I.K., Abubakirova F.Z. Dyzenteria bakteryjna. – Tash-kent – ​​1973. – 258 s.

75 Dulatova M.V., Golovacheva S.N., Savitskaya O.V. Zasada RPGA w ekspresowej diagnostyce infekcji i odporności. // W książce: Przygotowania do ekspresowej diagnostyki. – L., 1981. – s. 31-42.

76 Safonova N.V. Zastosowanie pośredniej reakcji hemaglutynacji w ogniskach ostrej infekcji jelitowej do identyfikacji osób zakażonych i poszukiwania ich źródeł. – L., 1974. – 11 s.

77 Solodovnikov Yu.P., Kalashnikova G.K., Subbotina Yu.L., Bobkin S.V. Pośrednia reakcja hemaglutynacji w badaniu przeciwciał u zdrowej, chorej i wyzdrowiałej czerwonki Sonne’a. – JMEI, 1971, nr 1. – s. 13-18.

78 Provotorov V.Ya. W kwestii leczenia chorych na czerwonkę. – W książce: Opieka środowiskowa nad chorymi zakaźnymi i zagadnienia leczenia chorych zakaźnych. Saratów, 1973. – s. 153-155.

79 Karalnik B.V. Metodologia i taktyka immunodiagnostyki patologii zakaźnych. – W książce: Zagadnienia immunologii klinicznej i diagnostyki immunologicznej. Alma-Ata, 1988. – 10 s.

80 Kaplin V.I., Klevtsova G.A., Koryukhina I.P. i inne Specyficzna reakcja krwi w początkowym okresie infekcji czerwonką i salmonellą oraz nowe możliwości wczesnej specyficznej diagnostyki ostrych infekcji jelitowych // VI Ogólnounijna. konf. według klinicznych biochemia, morfologia i immunol. zakaźny bol.: Streszczenia raportów. – Ryga, 1983. – s. 76-77.

81 Savilov E.D., Astafiev V.A., Mamontova L.M., Volodin Yu.F. Epidemiologiczne cechy czerwonki we wschodniej Syberii. //Nowosybirsk „Nauka”, 1994. – s. 42-43.

82 Iwanow K.S., Iwanow A.I. Diagnostyka ostrych infekcji biegunkowych // Klin. Miód. – 1992. – nr 7-8 – s. 64-69.

83 Karalnik B.V. Czerwone krwinki, ich receptory i odporność. //Usp.modern biol., M. – 1992. – t. 112, nr 1. – s. 52-61.

84 Garib F.Yu., Zalyalieva M.V. Metody badania subpopulacji limfocytów u ludzi w różnych stanach patologicznych // Zalecenia metodologiczne. – Taszkent, 1989. – 17 s.

85 Bahrg. Modabber F.Z. // J. Immunol.Met. – 1980. – V. 38, nr 3-4. – s. 203-216.

86 Tyagotin Yu.A. // Zagadnienia badania i leczenia pacjentów z chorobami układu krwionośnego. – L., 1975. – s. 21-25.

87 Novikov D.K., Novikova V.I. Komórkowe metody immunodiagnostyki. // Mińsk, 1979. – 222 s.

88 Smirnov B.N., Toropova N.I., Mokhova G.A. i inne // Materiały Ogólnounijnej Konferencji Naukowej „Problemy Biotechnologii Medycznej”. paź. 1988. – L., 1990. – s. 114-116.

89 Slavko E.A., Deryabin P.N., Karalnik B.V. Oznaczanie limfocytów wiążących antygen jako metoda wczesnej diagnostyki salmonellozy i czerwonki // Opieka zdrowotna Kazachstanu - Almaty - 1999. - nr 5-6 - str. 43-45.

90 Karalnik B.V., Kozhageldieva A.A., Karabekov A.Zh., Denisova T.G., Raipov O.R. Monitorowanie skuteczności leczenia jersiniozy wywołanej przez Yersinia enterocolitica // Medycyna. - Ałmaty - 2004. - Nr 4. - P.51-53.

91 Karalnik B.V., Denisova T.G., Plazun A.A. i inne Limfocyty wiążące antygeny o swoistości tuberkulinowej u królików zakażonych M. bovis w dynamice leczenia gruźlicy // Problematyka gruźlicy i chorób płuc. -M.-2006.- Nr 5.-P.48-53.

92 Karalnik B.V., Karabekov A.Zh., Denisova T.G., Kozhageldieva A.A., Zhunusova G.B. Diagnostyka różnicowa brucelozy i jersiniozy jelitowej wywołanej przez Yersinia enterocolitica serovar O9 // Medycyna - Almaty - 2004. - Nr 3. - P. 155-157.

93 Karalnik B.V., Denisova T.G., Zhunusova G.B., Fedosov S.A., Zhankin A.A., Ospanov K.S., Mizanbaeva S.U. Skuteczność różnych testów na przeciwciała i testu limfocytów wiążących antygen w diagnostyce brucelozy u ludzi. // Immunologia medyczna. – S.-P. - 2006. - tom 8. - nr 4. — s. 567 — 572.

94 Karalnik B.V., Denisova T.G., Grushina T.A., Tugambaev T.I. Analiza odpowiedzi immunologicznej świnek morskich zakażonych Brucella melitensis // Journal of microbiol.- M.-2002.- nr 1.- P.54-56

95 Karalnik B.V., Berezin V.E., Denisova T.G., Deryabin P.N., Slavko E.A. i inne Dynamika zawartości limfocytów z receptorami wirusa Sendai podczas immunizacji wirusem i kompleksem immunostymulującym jego glikoprotein // Izvest. Ministerstwo Nauki i Szkolnictwa Wyższego Republiki Kazachstanu. Ser.biol. i medyczne - Ałmaty - 1999. - nr 3. - s. 50-51.

96 Garib F.Yu., Gurariy N.I., Aliev Sh.R. Charakterystyka limfocytów wiążących antygen w przewlekłym zapaleniu wątroby u dzieci // Immunologia - 1988. - Nr 5. s. 91-93.

97 Finlay B.B., Falkow S.A. Porównanie strategii mikrobiologicznych gatunków Salmonella, Shigella i Jersinia // Interakcja Bakteria – Komórka Gospodarza, Alban R. Liss. Inc. – 1988. – s. 227-243.

98 Karalnik B.V., Denisova T.G., Keshileva Z.B., Pshenichnaya L.A. i inne Limfocyty i przeciwciała wiążące antygeny w diagnostyce kiły // Zakażenia przenoszone drogą płciową. – M. – 1999. – nr 5. — s. 34–36.

99 Sakanova L.M., Karalnik B.V., Ukbaeva T.D. i inne Immunoreagenty do identyfikacji limfocytów wiążących antygen i ich badania w diagnostyce zakażenia meningokokowego // Higiena, epidemiologia i immunobiologia - Almaty. -2002.- Nr 1-2.-P.69-72.

100 Slavko E.A., Deryabin P.N., Karalnik B.V., Karabekov A.Zh. O specyficzności limfocytów wiążących antygen wykrywanych u pacjentów z ostrymi chorobami zapalnymi przewodu pokarmowego. // Higiena, epidemiologia i immunobiologia. - Ałmaty. - 1999. - nr 2. — s. 102 — 105.

JESTEM.Sadykowa

Diagnostyka laboratoriów czerwonki

Tү jin: Zhedel іshek infekcjelaryn baqylauda, ​​\u200b\u200bdiagnostyka czerwonki nakty еWhen ⋩зу мörсеLeсі мљселі віліп сайлади. Bakterie czerwonka durys koyylgan diagnozuje naukę uaqytynda jemy zhurgizuge zhane epidemia karsy sharalardy Otkіzu ushіn manyzdy. Recenzja Corsetilgen Malimetter, Dysentery Ken Taraluyn negіzhіpy, sesimtaldygynyn zhetk mhetkrіzdіgі Zhane Kop stopen diagnostykalowe tu Kerek Ekenіn Korsetedi.

Tү zө zder: diagnoza, czerwonka, antygenbaylanystyrushy adis.

JESTEM.Sadycowa

Diagnostyka laboratoryjna czerwonki

Wznawiać: Rzetelna diagnostyka biegunki jest jedną z najważniejszych kwestii pozwalających na dokładne kontrolowanie infekcji jelitowej. Dokładne rozpoznanie biegunki bakteriozowej ma istotne znaczenie dla prawidłowego i trafnego leczenia pacjenta, a także podjęcia niezbędnych działań przeciwepidemicznych. Podane w ankiecie dane, biorąc pod uwagę powszechność biegunek, świadczą o braku wrażliwości i późnym pojawianiu się pozytywnych wyników wielu metod diagnostycznych. Istotne jest, aby rozwijać potencjał diagnostyczny pozwalający wykryć infekcję.

Słowa kluczowe: diagnostyka, czerwonka, metoda limfocytów wiążących antygen.

Test na czerwonkę to zbiorowa koncepcja obejmująca ogólne kliniczne i specyficzne metody badawcze, które pomagają nie tylko ustalić ostateczną diagnozę szigelozy (bardziej współczesna nazwa czerwonki), ale także ocenić stopień zaburzeń w różnych układach narządów w organizmie.

Czy Twój mąż jest alkoholikiem?

Diagnostyka laboratoryjna czerwonki obejmuje:

• ogólne metody kliniczne (tradycyjne badania krwi i moczu);
• współprogram;
• testy biochemiczne;
• metoda bakteriologiczna;
• reakcje serologiczne;
• alergiczny test skórny (rzadko);
• studia instrumentalne.

O celowości konkretnego badania diagnostycznego decyduje aktualna dokumentacja medyczna, czyli protokoły udzielania opieki medycznej. Regulowane są nie tylko elementy diagnozy shigellozy, ale także częstotliwość ich realizacji. Szczegół ten jest istotny w przypadku tzw. grupy dekretowej, czyli osób pracujących w branży spożywczej oraz grup dziecięcych – podstawą przyjęcia do pracy jest określona liczba negatywnych testów.

Ogólne metody kliniczne

Badanie składu komórkowego krwi

Masz dość ciągłego picia?

Wiele osób zna następujące sytuacje:

• Mąż znika gdzieś ze znajomymi i wraca do domu „wędkując”…
• Pieniądze znikają w domu, nie wystarczą nawet z wypłaty na chwilówkę...
• Dawno, dawno temu ukochana osoba staje się zła, agresywna i zaczyna się rozluźniać...
• Dzieci nie widzą ojca trzeźwego, tylko wiecznie niezadowolonego pijaka...

Jeśli rozpoznajesz swoją rodzinę, nie toleruj jej! Jest wyjście!

Ta rutynowa metoda badawcza może być dość pouczająca, szczególnie w przypadku czerwonki, ponieważ odzwierciedla ciężkość choroby. Przy łagodnym przebiegu ogólne badanie krwi może nie ujawnić żadnych zmian lub będą one nieistotne. Przeciwnie, w ciężkich postaciach choroby akcenty typowe dla infekcji bakteryjnej wyrażają się bardzo gwałtownie.

W ciężkich postaciach shigellozy można wykryć:

• znaczny wzrost bezwzględnej liczby leukocytów (to znaczy hiperleukocytoza);
• znaczne przesunięcie wzoru w lewo, czyli wzrost bezwzględnej i względnej liczby limfocytów pasmowych, aż do pojawienia się młodych form;
• toksyczna ziarnistość neutrofili;
• zwiększona szybkość sedymentacji erytrocytów;
• spadek poziomu wskaźnika barwy i stężenia hemoglobiny, liczby czerwonych krwinek (erytrocytów), czyli klasycznych objawów anemii.

Wyraźne zmiany w ogólnym badaniu krwi wskazują nie tylko na ciężki przebieg choroby, ale także na możliwy rozwój powikłań, takich jak krwawienie z jelit.

Z drugiej strony nawet wyraźne zmiany w ogólnym badaniu krwi są niespecyficzne, to znaczy można je zaobserwować w wielu innych chorobach i dlatego nie stanowią podstawy do postawienia ostatecznej diagnozy.

Badanie moczu

Jedynie w przypadku bardzo ciężkiego przebiegu choroby obserwuje się zmiany w ogólnym badaniu moczu, które są konsekwencją ciężkiego zatrucia. Do takich objawów zalicza się pojawienie się czerwonych krwinek, dużej liczby białych krwinek i wałeczków, a także wzrost stężenia białka. W celu wykluczenia ewentualnej patologii dróg moczowych należy powtórzyć ogólne badanie moczu po ustąpieniu objawów klinicznych czerwonki.

Współprogram

Analiza kału odzwierciedla wszystkie zmiany typowe dla czerwonkowego uszkodzenia jelit. Ponadto charakter i zakres zidentyfikowanych zmian jest bezpośrednio powiązany z ciężkością przebiegu klinicznego choroby.

Podczas badania kału obserwuje się następujące zmiany:

• zwiększona liczba leukocytów (zwykle może być ich tylko kilka);
• pojawienie się czerwonych krwinek (zwykle nieobecnych);
• śluz w różnych ilościach (zwykle nie wykrywany);
• niestrawionych cząstek pokarmu i nabłonka w wyniku zakłócenia procesów trawienia pokarmu, a także uszkodzenia tkanki nabłonkowej jelit.

Należy zrozumieć, że uzyskane wyniki coprogramu, a także ogólne badania kliniczne moczu i krwi, nie mogą być traktowane jako ostateczne rozpoznanie shigellozy. Aby określić konkretny typ Shigella, który spowodował rozwój objawów klinicznych choroby u danego pacjenta, a także ocenić jego wrażliwość na niektóre antybiotyki, konieczna jest pełna diagnostyka mikrobiologiczna czerwonki.

Specyficzna diagnostyka

W przypadku podejrzenia czerwonki diagnostyka polega na wyizolowaniu patogenu z płynów ustrojowych pacjenta (głównie z kału, rzadziej z płukania żołądka i wymiocin) lub określeniu miana przeciwciał ochronnych, które powstają w odpowiedzi na wprowadzenie czynnika bakteryjnego.

Metoda bakteriologiczna

Jest to najbardziej powszechna, pouczająca i dostępna w większości przypadków i większości klinik. Pobranie kału do badania należy przeprowadzić w pierwszych dniach choroby. Do badania można stosować kał pozyskiwany w sposób naturalny, a także pobrany za pomocą rurki sigmoidoskopowej lub wacika (rodzaj rozmazu). Materiał biologiczny zebrać do czystego pojemnika, który nie został poddany działaniu roztworów dezynfekcyjnych.

Największą ilość czynnika wywołującego czerwonkę wykrywa się w tych obszarach stolca, w których występuje śluz i ropa. Siew odbywa się na konwencjonalnych pożywkach - Levin, Ploskireva, Endo. Lekarz otrzymuje wynik, zawierający nie tylko wyczerpującą informację o rodzaju Shigella, ale także parametry wrażliwości na leki przeciwdrobnoustrojowe, 3-5 dni po pobraniu materiału.

Metoda serologiczna

Mniej pouczające w porównaniu z metodą bakteriologiczną. Wynika to z faktu, że obraz kliniczny niepowikłanej i łagodnej czerwonki nie utrzymuje się dłużej niż 5-7 dni, a metoda serologiczna w przypadku czerwonki trwa znacznie dłużej. Rzadko zdarza się, aby pacjent spędzał 2–2,5 tygodnia w szpitalnym łóżku w oczekiwaniu na wyniki badań serologicznych. Testy serologiczne mogą być przydatne i pouczające jako metoda diagnostyki retrospektywnej lub w badaniach naukowych.

Najczęściej przeprowadza się reakcję aglutynacji: obecność przeciwciał ochronnych w określonym stężeniu wykrywa się w surowicy krwi pacjenta za pomocą znanych antygenów. Wskazana jest ocena zawartości informacyjnej reakcji aglutynacji w dynamice.

Reakcja aglutynacji pośredniej i/lub bezpośredniej jest mniej specyficzna. Surowicę krwi pobiera się nie wcześniej niż 4-5 dni choroby i ponownie w 12-14 dniach od wystąpienia objawów klinicznych. Diagnostyka alergii

W połowie XX wieku jednym z obowiązkowych testów na obecność szigelozy o dowolnym nasileniu był test alergiczny skórny z dyzenteryną (test Tsuverkalova). We współczesnej praktyce lekarskiej, ze względu na alergenność populacji i niespecyficzność tego testu, większość klinik odmawia jego wykonania.

Diagnostyka instrumentalna

Najpopularniejszą metodą jest sigmoidoskopia. Do jego przeprowadzenia potrzebny jest jedynie kompetentny, przeszkolony specjalista oraz urządzenie przenośne. Nie ma potrzeby wydzielania osobnego pomieszczenia, jego specjalnego wyposażenia i innych szczegółów technicznych.

Rurkę sigmoidoskopu wprowadza się do odbytu na określoną głębokość. Stan błony śluzowej dolnej odbytnicy i zwieracza ocenia się wizualnie. W przypadku wykrycia czerwonki:

• wady wrzodziejące różnej wielkości;
• rozlany obrzęk i przekrwienie błony śluzowej;
• obszary krwawienia.

Sigmoidoskopia ma na celu ocenę skuteczności przepisanej terapii (czy występuje dodatnia dynamika, czy nie, czyli gojenie się wrzodów), a także wykluczenie innych chorób o podobnych objawach klinicznych (niespecyficzne wrzodziejące zapalenie jelita grubego, powstawanie nowotworu). W początkowym okresie shigellozy badanie to nie jest wskazane, ponieważ dyskomfort pacjenta związany z zabiegiem przekracza jego wartość diagnostyczną.

Fibrekolonoskopia (penetracja do wyższych odcinków jelita) jest wskazana tylko w przypadku konieczności wykluczenia innych chorób jelit (guzów nowotworowych).

Zatem tylko kompleksowa diagnoza czerwonki pozwala prawidłowo ocenić ciężkość stanu pacjenta i skuteczność przepisanej terapii.

Treść artykułu: classList.toggle()">przełącz

Dyzenteria jest powszechną chorobą zakaźną, bardziej znaną zwykłemu człowiekowi jako infekcja jelitowa. Choroba ta zlokalizowana jest w jelicie grubym (jego dalszej części) i wywoływana jest przez czynnik bakteryjny z rodzaju Shigella.

Dyzenteria ma charakterystyczny ostry przebieg i może powodować wiele powikłań. Wczesna identyfikacja problemu we wczesnych stadiach jego rozwoju umożliwi skuteczniejszą walkę z infekcją poprzez przepisanie wysoce ukierunkowanej terapii przeciwbakteryjnej i zastosowanie innych środków ze wskazań ratujących życie.

Wskazania do badań diagnostycznych w kierunku czerwonki

Bezpośrednim wskazaniem do przepisania kompleksowej diagnozy jest podejrzenie obecności shigellozy ze wstępną diagnozą postawioną przez lekarza pierwszego kontaktu. Po wstępnej wizycie pacjenta wystawia skierowanie na badanie, rejestruje jego dolegliwości i zbiera wywiad.

Wskazania do podjęcia odpowiednich działań są nierozerwalnie związane z ostrymi, wyraźnymi objawami czerwonki. Do jego głównych etapów należą:

• Manifestacja pierwszych oznak infekcji bakteryjnej kilka godzin lub dni po zakażeniu (konkretny okres zależy od drogi przedostania się patogenu do organizmu). Występuje ogólne złe samopoczucie, ból głowy, dreszcze;
• Występowanie głównych objawów– ból brzucha, zaburzenia stolca i trawienia, wysoka gorączka, letarg i silne osłabienie, utrata apetytu;
• Szczyt negatywnych wydarzeń– bardzo częste i luźne stolce z domieszką śluzu, skrzepów krwi, ropy, ciągły dyskomfort w podbrzuszu, nasilający się asynchronicznie, niezależnie od aktywności fizycznej i spożywania pokarmów. Dodatkowo skóra staje się blada, błony śluzowe zmieniają kolor w kierunku ciemniejszych odcieni, język pokrywa się brązowym nalotem. Często diagnozuje się nieprzyjemny zapach z ust. Zespół bólowy w okolicy brzucha przybiera charakter skurczowy, często zmienny, przy palpacji okolicy biodrowej po stronie lewej znacznie się nasila. Występuje również spadek ciśnienia krwi i przyspieszone bicie serca.

Metody diagnostyczne

Współczesna medycyna oferuje pacjentowi szeroką gamę metod diagnozowania czerwonki, mających na celu zarówno ogólne poszukiwanie Shigella, jak i określenie ich specyficznego typu grupowego i serotypu.

Warto to zauważyć żadna z poniższych analiz nie może być w 100% obiektywna i informacyjna– ich wiarygodność waha się od 60 do 85 proc. w zależności od specyfiki czynności, kwalifikacji personelu laboratorium, jakości pobieranych próbek, stosowania się pacjenta do wszystkich zaleceń przed oddaniem materiału oraz warunków jego przechowywania, nowoczesności i trafności diagnostyki sprzęt i inne czynniki.

Dlatego ostateczne rozpoznanie shigellozy można postawić dopiero po uzyskaniu pozytywnych wyników kilku alternatywnych metod badawczych, niezależnych od siebie, ale przeprowadzonych w jednym okresie czasu.

Najczęściej diagnostyka laboratoryjna czerwonki obejmuje:

• Współprogram;
• Ogólna analiza krwi;
• Kultura bakteriologiczna;
• Ogólna analiza moczu;
• Badania serologiczne;
• Test przeciwciał;
• Chemia krwi;
• Badania immunologiczne;
• Sigmoidoskopia;
• W razie potrzeby inne czynności.

Ważnym etapem w rozpoznaniu szigellozy jest także kompleksowa profesjonalna diagnostyka różnicowa, która pozwala wykluczyć inne infekcje lub patologie o podobnych objawach.

Coprogram lub analiza kału

Najważniejszą analizą w przypadku podejrzenia czerwonki jest coprogram, pozwalający określić odchylenia od normy w badanym kale. Pracownik laboratorium diagnozując dostarczony materiał ocenia jego skład, obecność zanieczyszczeń, właściwości fizykochemiczne.

Przed przesłaniem tego typu analiz należy odpowiednio przygotować się do badań laboratoryjnych.:

1. na 10 dni przed pobraniem próbki należy zaprzestać spożywania alkoholu;
2. Co najmniej 5 dni przed badaniem należy stosować dietę nr 5 wg Pevznera;
3. Nie można badać kału, jeśli został uzyskany poprzez lewatywę lub zawiera obce zanieczyszczenia, na przykład mocz, ślady menstruacji;
4. na 3 dni przed coprogramem należy zaprzestać przyjmowania jakichkolwiek leków (zarówno doustnie w postaci czopków, jak i doustnie, dożylnie itp.), a także nie prowadzić badań z użyciem środków pomocniczych (wazelina lub olej rycynowy, bizmut, bar);
5. Materiał należy pobrać po samoistnej defekacji z 4-5 przypadkowych miejsc, umieszczając go za pomocą szpatułki lekarskiej w specjalnym plastikowym pojemniku, wypełniając pojemnik maksymalnie do 1/3. Próbkę należy dostarczyć w ciągu maksymalnie 10 godzin od bezpośredniego pobrania, z zastrzeżeniem warunków przechowywania w lodówce w temperaturze od 4 do 6 stopni.

Kompleksowa diagnostyka kału za pomocą coprogramu obejmuje badania według następujących kryteriów:

• Konsystencja. Zwykle powinien być gęsty, w przypadku czerwonki powinien być papkowaty lub płynny;
• Formularz. Normalnie ustrukturyzowany, jednorodny i uformowany, z shigellozą - niejednorodny, częściowo uformowany, słabo ustrukturyzowany;
• Kolor. Zwykle brązowy, po uszkodzeniu bakteryjnym ulega przebarwieniu, czasem różowawemu lub czerwonawemu (w obecności skrzepów krwi);
• Szlam. Zwykle nieobecny, w przypadku infekcji jelitowej może występować w dużych ilościach;
• Krew. Zwykle tak nie jest, ale w przypadku czerwonki tak;
• Leukocyty. Zwykle nie są wykrywane, w przypadku shigellozy w strefie wzrokowej rozpoznaje się do 50 komórek, głównie neutrofili;
• Komórki nabłonkowe. Zwykle są to śladowe ilości, ale przy bakteryjnej infekcji jelitowej jest ich całkiem sporo.

Wyniki coprogramu przekazywane są pacjentowi lub lekarzowi średnio po 3-4 dniach od przesłania materiału.

Siew

Inną powszechną metodą wykrywania szigelozy w badaniach pacjentów jest posiew bakteriologiczny. Istotą działań jest umieszczenie poszczególnych części nadesłanego materiału na różnorodnych pożywkach przystosowanych do wzrostu różnych patogenów infekcji bakteryjnych. Jeśli Shigella jest obecna w organizmie, to w określonej „glebie” zacznie się aktywnie rozmnażać, tworząc nowe kolonie.

Technikę tę stosuje się zazwyczaj w celu potwierdzenia badań pierwotnych wskazujących na obecność czerwonki, gdyż wyniki posiewu bakteryjnego znane są już po tygodniu.

Oprócz identyfikacji patogenu, analiza ta pozwala również najdokładniej wybrać wysoce ukierunkowany lek przeciwbakteryjny, który skutecznie zniszczy infekcję.

Zidentyfikowaną próbkę dzieli się na kilka części, po czym dodaje się różne antybiotyki i całą grupę próbek umieszcza się w termostacie – próbki, w których kolonie obumierają szybciej i zostaną uznane za najskuteczniejsze, co pozwoli lekarzowi zastąpić szerokie -leki przeciwbakteryjne o spektrum działania w leczeniu zachowawczym z lekami bardziej skutecznymi.

Krew i mocz w czerwonce

Wykonywanie ogólnych badań krwi i moczu jest obowiązkowym elementem kompleksowej diagnostyki w procesie identyfikacji i potwierdzenia rozpoznania szigelozy.

• Analiza krwi. W przypadku infekcji jelitowej powyższego typu, w okresie aktywnego rozwoju można wykryć spadek wskaźników hematokrytu i immunoglobulin. Często wykrywa się także leukocytozę z przewagą neutrofili i ziarnistością toksykologiczną tych składników, zmniejszeniem stężeń składników eozynofilowych i płytkowych. Ponadto możliwa jest limfopenia, limfocytoza, zmniejszenie wskaźnika limfocytów i wzrost ESR;
• Analiza moczu. Podczas diagnozowania tego płynnego podłoża w przypadku rozwoju shigellozy obserwuje się znaczny wzrost stężenia wałeczków i białek bezpośrednich, a w moczu często obecne są czerwone krwinki.

Badanie serologiczne

Nowoczesny test serologiczny to kompleksowe badanie na obecność przeciwciał przeciwko Shigella, które mogą występować we krwi człowieka. Powodem tego procesu jest aktywna praca układu odpornościowego, który wydziela własne związki białkowe osocza, które zwalczają zakaźne zmiany bakteryjne.

Najdokładniejszą i najszybszą metodą identyfikacji opisanych powyżej pierwiastków jest tzw. reakcja hemaglutynacji pośredniej. Istotą metody jest umieszczenie na elementach erytrocytów szeregu antygenów różnych szczepów infekcyjnych po czym do próbek dodaje się ekstrakt surowicy krwi pacjenta. W próbkach pozytywnych reakcje interakcji między przeciwciałami i antygenami rozpoczynają się od adhezji czerwonych krwinek, co umożliwia identyfikację Shigella.

Diagnostyka różnicowa czerwonki

Dość ważnym etapem identyfikacji czerwonki i potwierdzenia diagnozy jest diagnostyka różnicowa - profesjonalna technika „wykrywania” innych chorób i patologii o podobnych objawach, objawiających się zatruciem organizmu i zmianami jelitowymi. Najczęściej porównuje się shigellozę:

• Salmonelloza. Ta zmiana ma prawie identyczne objawy, ale ogólne zatrucie jest słabo wyrażone i występuje tylko w wymazanej formie;
• Aszerichioza. Ten typ choroby jest wywoływany przez patogeny atakujące jelito cienkie, a nie grube. Objawy zatrucia są nieco słabsze niż w przypadku shigellozy;
• Cholera. Bacillus cholery atakuje przewód pokarmowy i jelita, dochodzi do znacznego odwodnienia na skutek niezwykle ciężkiej, częstej i obfitej biegunki. W stolcu nie ma śluzu ani krwi, natomiast ogólne objawy zatrucia są słabsze niż w przypadku czerwonki;
• Jersinioza. W przypadku jersiniozy, oprócz ciężkiego zatrucia, obserwuje się liczne uszkodzenia narządów i układów (nerki, wątroba, ośrodkowy układ nerwowy itp.), którym towarzyszą zaburzenia odpływu moczu, żółtaczka i inne zespoły.
• Zakażenie rotawirusem. Oprócz jelit infekcja rotawirusem prawie zawsze atakuje górne drogi oddechowe;
• Ostre zapalenie wyrostka robaczkowego. Ten stan patologiczny wiąże się z podrażnieniem otrzewnej, znacznym wzrostem temperatury, a także silnym bólem w prawym podbrzuszu.

Diagnostyka laboratoryjna czerwonki bakteryjnej

Dyzenteria jest antroponotyczną chorobą zakaźną wywoływaną przez bakterie z rodzaju Shigelli, charakteryzuje się wrzodziejącymi zmianami w jelicie grubym i ogólnym zatruciem organizmu. Klasyfikację patogenów czerwonki (Shigella) przedstawiono w tabeli 12, metody diagnostyki mikrobiologicznej na schemacie 13.

Tabela 13. Klasyfikacja Shigelli

Gatunek Shigelli Serowary Shigella Shigella dysenteriae 1-12 Shigella Flexneri 1a, 1b, 2a, 2b, 3a, 3b, 4a, 4b, 5,6, var X, var Y Shigella Boydii 1-18 Shigella Sonnei -

Schemat 12. Diagnostyka mikrobiologiczna czerwonki

Metody ekspresowe (wykazanie obecności patogennej E. coli lub jej produktów w materiale badanym) Sondy DNA lub PCR w celu wykrycia konkretnego fragmentu DNA Shigella, RIF

Metoda mikroskopowa w przypadku czerwonki nie stosuje się go ze względu na morfologiczne podobieństwo Shigella do innych enterobakterii.

Metoda bakteriologiczna jest główną metodą diagnostyki laboratoryjnej czerwonki . Badany materiał inokuluje się na podłożach Ploskireva i Endo na szalkach Petriego oraz na podłożu akumulacyjnym selenitu, z którego po 16-18 godzinach dokonuje się ponownego wysiewu na określone gęste pożywki. Uprawy uprawia się w termostacie w temperaturze 37 0 C przez 18 - 24 godziny.

Drugiego dnia badana jest natura kolonii. Bezbarwne gładkie kolonie Shigella ujemne pod względem laktozy hoduje się na jednej z pożywek poliwęglowodanowych (Olkenitsky, Ressel, Kligler) w celu zgromadzenia czystej kultury. Trzeciego dnia uwzględnia się wzór wzrostu na podłożu poliwęglowodanowym, a materiał przenosi się także na podłoże różnicujące (Gissa i wsp.) w celu biochemicznej identyfikacji wyizolowanej kultury. Strukturę antygenową wyizolowanej kultury określa się za pomocą OPA w celu jej identyfikacji pod względem gatunku i poziomu serotypu. Czwartego dnia uwzględnia się wyniki aktywności biochemicznej (Tabela 14).

Tabela 14. Właściwości biochemiczne Shigelli

Gatunek Shigelli Fermentacja indol glukoza laktoza mannitol dulcyt ksylozy ornityna S. dysenteriae Do - - - - - - S. flexneri Do - Do - - - - S. boydii Do - Do - ± - - S. sonnei Do ± Do k + ± Do +

Oznaczenia: „k” – fermentacja substratu z utworzeniem kwasu, „+” – obecność cechy, „-” – brak cechy, „±” – cecha niestabilna.

Shigella w przeciwieństwie do Escherichia są mikroorganizmami nieruchomymi, nie fermentują laktozy, rozkładają glukozę bez tworzenia gazu i nie dekarboksylują lizyny. W celu serotypowania najpierw RA umieszcza się na szkle z mieszaniną surowic przeciwko gatunkom i odmianom Shigella dominującym na danym obszarze, a następnie RA umieszcza się na szkle z surowicami z gatunków monoreceptorowych. Określa się także wrażliwość wyizolowanej hodowli na poliwalentny bakteriofag czerwonki i antybiotyki. Do celów epidemiologicznych oznacza się fagowar i colicynwar wyizolowanego Shigelli. Jedną z właściwości Shigelli jest zdolność wywoływania zapalenia rogówki u świnek morskich (test rogówkowo-spojówkowy)

Metoda serologiczna. Do oznaczania przeciwciał we krwi pacjentów chorych na czerwonkę (zwykle w postaci przewlekłej) stosuje się RNGA z erytrocytami Shigella Diagnosticums. Miana diagnostyczne: dla Shigella Flexnera u dorosłych – 1:400, u dzieci do 3. roku życia – 1:100, u dzieci powyżej 3. roku życia – 1:200, dla pozostałych Shigella – 1:200. Reakcję zwykle powtarza się, pobierając surowicę krwi co najmniej 7 dni później; Znaczenie diagnostyczne ma czterokrotny lub większy wzrost miana przeciwciał.

Metody ekspresowe w przypadku czerwonki - bezpośredni i pośredni RIF, reakcja koaglutynacji, ELISA, RNGA z diagnostyką przeciwciał erytrocytów w celu szybkiego wykrycia Shigella w materiale badanym (najczęściej w kale), a także PCR.

Shigelloza to choroba wywoływana przez drobnoustroje z rodzaju Shigella, które przenoszone są drogą fekalno-oralną, powodują zatrucie i najczęściej atakują końcowy odcinek jelita grubego.

Przyczyną shigellozy są drobnoustroje z rodziny Enterobacteriaceae, rodzaju Shigella. Jest to zazwyczaj infekcja bakteryjna. Pod mikroskopem drobnoustroje wyglądają jak pręciki z zaokrąglonymi końcami. Nie mają wici ani rzęsek, nie tworzą torebek ani zarodników. Po zabarwieniu metodą Grama pozostają bezbarwne (bakterie Gram-ujemne). Mają różną strukturę antygenową i właściwości biochemiczne.

Te dwie zasady leżą u podstaw ich klasyfikacji.

Obecnie istnieją cztery główne typy patogenów shigellozy:

• czerwonka shigella;
• Shigelli Boyd;
• Shigella Flexnera;
• Shigelli Sonne.

W zależności od różnych kombinacji antygenów serologicznych i komórkowych wyróżnia się ponad 70 odmian tych drobnoustrojów. Zawierają egzotoksyny, a także endotoksyny termolabilne i termostabilne.

Nawiasem mówiąc, shigelloza ma inną popularną nazwę - czerwonkę.

Shigella jest w stanie przenikać przez nabłonek błony śluzowej jelita grubego i namnażać się w nim (inwazyjność). Mogą także tworzyć substancje aktywnie oddziałujące na żywe komórki (kolicynogenność). Są odporne na różne czynniki środowiskowe. W glebie, wodzie, jedzeniu, a także na powierzchni mebli, tkanin i naczyń zachowują żywotność do dwóch tygodni.

A Shigella może przeżyć w ściekach nawet cały miesiąc. Ale szybko umierają pod wpływem bezpośredniego światła słonecznego, fenolu, a także podczas gotowania.

Termin „czerwonka” został po raz pierwszy użyty w czasach Hipokratesa. Wtedy oznaczało to jakąkolwiek biegunkę z krwią. Dopiero w 1891 r. A.V. Grigoriew odkrył shigellę u swoich pacjentów z objawami zapalenia jelita grubego. Następnie K. Shiga ostatecznie udowodnił, że przyczyną czerwonki jest właśnie ten mikroorganizm. Później różni naukowcy odkryli inne rodzaje drobnoustrojów, które mogą powodować szigellozę.

Epidemiologia

Szigeloza jest infekcją typowo antroponotyczną. Zakażenie następuje wyłącznie od chorego. Choroba może mieć charakter ostry i przewlekły lub w ogóle się nie objawiać (przebieg ukryty), jeśli mówimy o takim zjawisku, jak przenoszenie czynników zakaźnych. W tej sytuacji osoba nie zachoruje, ale może zarażać innych.

Jest to sytuacja niebezpieczna, gdyż bardzo trudno jest zidentyfikować przewoźnika.

Dyzenteria przenoszona jest drogą fekalno-oralną. Drogi przenoszenia są różne – poprzez żywność, wodę, a także poprzez zwykłe przedmioty gospodarstwa domowego. Najczęstszą drogą przenoszenia jest woda. Wynika to z faktu, że woda jest łatwo zanieczyszczana, a Shigella żyje w niej przez długi czas. Najczęstszą metodą zakażania dzieci jest kontakt i kontakt domowy – poprzez skażone zabawki, naczynia, bieliznę i artykuły gospodarstwa domowego.

Na shigellozę chorują znacznie częściej dzieci niż dorośli (60–70%). Najbardziej podatne jest dziecko w wieku przedszkolnym (2–7 lat). Jeśli chodzi o sezonowość, choroba ta najczęściej występuje w okresie letnio-jesiennym. Odporność po zakażeniu jest niestabilna. Produkcja przeciwciał jest specyficzna tylko dla jednego serotypu.

Patogeneza

W dalszej części przewodu żołądkowo-jelitowego na Shigella wpływa z kolei kwas solny i żółć. Pod ich wpływem większość drobnoustrojów umiera. Następnie patogen przedostaje się do końcowego odcinka jelita grubego, gdzie wraz z zniszczeniem następuje także jego rozmnażanie. W wyniku lizy mikroorganizmów uwalniane są toksyny. Wchłaniane przez błonę śluzową przedostają się do krwi i powodują ostrą toksyczność w organizmie. Wpływa przede wszystkim na ośrodkowy układ nerwowy, ale zaburzone zostaje także funkcjonowanie innych układów:

• dokrewny;
• układ sercowo-naczyniowy;
• systemy krzepnięcia krwi;
• moczowy itp.

Oprócz toksycznych uszkodzeń organizmu obserwuje się także procesy zapalne w błonie śluzowej jelita grubego.

Shigella „przykleja się” do enterocytów, a następnie wnika w nie, aktywnie się tam namnażając. Z tego powodu patogen atakuje coraz większą tkankę jelitową, a stan zapalny się rozprzestrzenia.

Ale wraz z tym powstają również reakcje obronne.

Wzrasta stężenie IgM, IgG i IgA. Aktywowane są komórki NK i wzrasta synteza interferonów y i α. Jeśli układ odpornościowy działa dobrze, w większości przypadków shigellozy następuje szybki powrót do zdrowia.

Obraz kliniczny

W zależności od zmienności objawów istnieją różne typy i formy szigelozy. Wszystko to znajduje odzwierciedlenie w ich klasyfikacji. Opiera się wyłącznie na obrazie klinicznym choroby.

Wskaźniki laboratoryjne nie są brane pod uwagę, chyba że pośrednio wskazują stopień dotkliwości.

Klasyfikacja shigellozy

Według formularza:

• typowy;
• nietypowy (bezobjawowy, wymazany, nosicielstwo bakterii).

W zależności od czasu trwania choroby:

• pikantny;
• przewlekły;
• chroniczny.

Ze względu na charakter choroby:

• gładki;
• niegładki.

Według wagi:

• światło;
• przeciętny;
• ciężki.

Typowe objawy

Choroby zakaźne poprzedza okres inkubacji. W przypadku typowej postaci shigellozy jest ona dość zmienna (od 3–4 godzin do siedmiu dni). Średnio okres ten trwa 2–3 dni. Wszystko zależy od dawki patogenu, jego agresywności i dróg przenoszenia. Ważny jest także stan makroorganizmu, w który wpada Shigella. U osoby z osłabionym układem odpornościowym okres prodromalny będzie krótszy, a jeśli będzie dobry, to dłuższy.

Czerwonka zaczyna się ostro. Wszystkie objawy związane z tą patologią pojawiają się w ciągu 1-2 dni. Dominują zespoły zatrucia i zapalenia okrężnicy (zapalenie końcowego odcinka jelita grubego). Zespół zatrucia charakteryzuje się następującymi objawami:

• gorączka;
• dreszcze;
• złe samopoczucie (ból głowy, senność, osłabienie, letarg);
• częstoskurcz;
• zaburzenia w oddawaniu moczu;
• mdłości;
• wymioty itp.

Podwyższona temperatura ciała zwykle utrzymuje się przez dwa do trzech dni, a następnie powraca do normy. Nasilenie zatrucia jest wprost proporcjonalne do ciężkości choroby i służy jako główne kryterium jej określenia. Drugi zespół towarzyszący czerwonce, zapaleniu jelita grubego, obejmuje następujące objawy:

• ciągły lub kłujący ból brzucha (lewa okolica biodrowa);
• zwiększona częstotliwość wypróżnień;
• zmiana konsystencji stolca (bardziej wodnista lub wodnista);
• obecność zanieczyszczeń w kale (śluz, warzywa, krew);
• tenesmus itp.

Przed potrzebą wypróżnienia ból brzucha nasila się. Opróżnianie odbytnicy nie łagodzi bólu. Częste, luźne stolce zawsze mają początkowo charakter kałowy, a następnie śluzowo-krwawy. Tenesmus występuje z powodu skurczów mięśni gładkich dystalnej części jelita grubego. Często prowadzi to do objawów hemoroidalnych.

Warto zauważyć, że zespoły zatrucia i zapalenia jelita grubego są również bezpośrednio powiązane.

Badanie fizykalne ujawnia następujące objawy:

• blada i sucha skóra;
• pogrubienie języka;
• wycofanie brzucha;
• ból podczas palpacji brzucha;
• dudnienie pętli jelitowych podczas palpacji brzucha;
• zagęszczenie i słaba ruchliwość esicy,
• osłabienie zwieracza odbytu;
• objawy zapalenia zwieraczy (zaczerwienienie skóry wokół odbytu ze swędzeniem i pieczeniem).

Ostry okres shigellozy może trwać od pięciu dni do dwóch tygodni. Potem następuje okres rekonwalescencji (rekonwalescencji). Objawy ustępują. Poprawia się Twoje samopoczucie i poprawia się nastrój. Kiedy organizm całkowicie pozbędzie się patogenu, następuje powrót do zdrowia.

Nietypowe objawy

Nietypowa czerwonka może być ukryta lub przebiegać bezobjawowo. W takich przypadkach objawy kliniczne są minimalne:

• zmniejszony apetyt;
• lekkie złe samopoczucie;
• okresowe ataki nudności itp.

Nie ma objawów klinicznych charakterystycznych dla ostrego procesu. Ludzie najczęściej przypisują takie objawy zwiększonemu zmęczeniu i nie zgłaszają się do lekarza. Infekcja po prostu nie ma czasu na uchwycenie dużego obszaru błony śluzowej jelit, ponieważ układ odpornościowy niszczy ją w odpowiednim czasie. Po tygodniu lub dwóch wszystko znika bez śladu.

Przenoszenie Shigelli jest niezwykle rzadkie. Wykrywa się go przypadkowo podczas rutynowych badań lekarskich. Patogen wysiewa się raz. Nie jest wykrywany w kolejnych próbkach. Pacjent czuje się dobrze. Nie ma nawet minimalnych przejawów. Badania bakteriologiczne i instrumentalne również pozostają w normie.

Komplikacje

Dyzenterii często towarzyszą powikłania. Konwencjonalnie można je podzielić na dwie grupy:

• konkretny;
• niespecyficzny.

Specyficzne powikłania są spowodowane bezpośrednio przez samą infekcję. Obejmują one:

• wstrząs zakaźno-toksyczny;
• zapalenie otrzewnej;
• wgłobienie;
• dysbakterioza;
• utrata jelit;
• szczelina odbytu itp.

• zapalenie płuc;
• zapalenie ucha;
• zapalenie pęcherza;
• ropne zapalenie skóry itp.

Shigeloza u dzieci występuje z powikłaniami znacznie częściej niż u dorosłych.

Rozpoznanie shigellozy

Na etapie przedszpitalnym postawienie wstępnej diagnozy czerwonki nie jest trudne dla doświadczonego lekarza. Obraz kliniczny jest dość charakterystyczny. Obecność świeżej krwi w kale zawsze przyciąga uwagę zarówno pacjenta (lub rodziców dziecka), jak i lekarza. Jest to możliwe tylko w przypadku tej choroby. Patogen zostanie zidentyfikowany w szpitalu. Oprócz objawów patognomonicznych, charakterystyczny przebieg epidemiologiczny i zależność nasilenia objawów zapalenia jelita grubego od stopnia zatrucia pozwalają podejrzewać tę chorobę.

Diagnostyka laboratoryjna czerwonki obejmuje przede wszystkim metodę bakteriologiczną. Chociaż infekcję jelita grubego wykrywa się również w zwykłym coprogramie. Wystąpi wyraźna leukocytoza, duża liczba czerwonych krwinek, śluz i brak detrytusu. Posiewy kału najlepiej wykonać nie później niż dwie godziny po pobraniu, a najlepiej bezpośrednio przy łóżku pacjenta. Rozwój drobnoustrojów na pożywkach będzie nie tylko materiałem do badań serologicznych, ale także umożliwi określenie wrażliwości bakterii na antybiotyki.

Metody ekspresowe pomagają określić rodzaj patogenu:

• reakcja immunoenzymatyczna;
• reakcja koaglutynacji;
• reakcja aglomeracji węgla;
• reakcja aglutynacji lateksu;
• reakcja dopełniacza itp.

W celu dokładniejszej diagnozy stosuje się metody serologiczne (reakcja aglutynacji i reakcja hemaglutynacji pośredniej).

Leczenie shigellozy

Chorobę tę można leczyć zarówno w szpitalu, jak i w domu. Wszystko zależy od ciężkości choroby.

Dzieci do pierwszego roku życia podlegają 100% hospitalizacji.

Jak każdą patologię, czerwonkę zaczyna się leczyć, przepisując schemat i dietę. W ostrym okresie reżim jest zawsze w łóżku, a następnie na oddziale. Dieta jako całość nie różni się od zwykłej diety, z wyjątkiem nacisku na łatwe trawienie (niska zawartość tłuszczu, żywność gotowana i gotowana na parze). Takie podejście wynika z faktu, że większość błony śluzowej jelit zachowuje zdolność wchłaniania składników odżywczych w czasie choroby.

Leczenie polega na przepisywaniu antybiotyków, które przede wszystkim usuwają przyczynę choroby. Odbywa się to z uwzględnieniem wrażliwości. Najczęściej przepisywany jest jeden lek. W przypadku powikłań lub ciężkich przypadków podaje się dwa leki. Grupy środków przeciwbakteryjnych z wyboru to:

• aminoglikozydy (drugiej i trzeciej generacji);
• cefalosporyny (drugiej i trzeciej generacji);
• nitrofurany;
• fluorochinolony.

Przebieg leczenia zależy od konkretnego leku, ale średnio wynosi od pięciu do dziesięciu dni. W przypadku atypowej szigelozy i przenoszenia bakterii antybiotyki nie są przepisywane.

W terapii patogenetycznej stosuje się następujące leki:

• leki przeciwskurczowe;
• leki przeciwgorączkowe;
• dezagregatory;
• roztwory soli fizjologicznej i koloidalne dożylne;
• neuroleptyki;
• gangloblokery itp.

Im wyższy stopień zatrucia w shigellozie, tym dłuższa lista leków patogenetycznych.

Zapobieganie shigellozie

Środki zapobiegające rozwojowi czerwonki są następujące:

• sanitarno-higieniczne;
• Edukacja zdrowotna;
• pracować w źródle infekcji.

Zapobieganie shigellozie jest szczególnie ważne w zakładach przetwórstwa spożywczego, przedszkolach, szkołach i szpitalach. Przede wszystkim jest to kontrola sanitarna w całym budynku, regularny wywóz śmieci i kontrola owadów.

Biorąc pod uwagę wysokie prawdopodobieństwo przeniesienia wirusa przez wodę, ważne jest, aby zapewnić, że źródła wody nie zostaną skażone.

W przypadku zidentyfikowania pacjenta z shigellozą konieczne jest prowadzenie bieżącej dezynfekcji w czasie epidemii. W przypadku hospitalizacji przeprowadzana jest ostateczna dezynfekcja. To samo postępuje się w przypadku rekonwalescencji w domu. Wszystkie osoby, które miały kontakt z pacjentem, są pod obserwacją lekarską. Muszą przejść badania bakteriologiczne. Jeśli istnieją ku temu wskazania, przeprowadza się leczenie zapobiegawcze. Wszystko to pomaga zatrzymać rozprzestrzenianie się infekcji.