Термический метод дезинфекции. Описания, примеры

Уничтожение микробов в окружающей среде

Для уничтожения микробов (бактерий, виру­сов, грибов и простейших) на различных пред­метах и в материалах, используемых в медицине, в пищевой промышленности и в быту, применя­ют два способа: стерилизацию и дезинфекцию.

Стерилизация

Стерилизация (от лат. sterilis - бесплодный) предполагает полную инактивацию микробов в объектах, подвергающихся обработке.

Существует три основных метода стерили­зации:

    тепловой,

  1. химической.

Тепловая стерилизация основана на чувстви­тельности.микробов к высокой температуре. При 60 "С и наличии воды происходит денату­рация белка, деградация нуклеиновых кислот, липидов, вследствие чего вегетативные фор­мы микробов погибают. Споры, содержащие очень большое количество воды в связанном состоянии и обладающие плотными оболоч­ками, инактивируются при 160-170 °С.

Для тепловой стерилизации применяют, в основном, сухой жар и пар под давлением.

Стерилизацию сухим жаром осуществля­ют в воздушных стерилизаторах (прежнее название - «сухожаровые шкафы или печи Пастера»). Воздушный стерилизатор пред­ставляет собой металлический плотно закры­вающийся шкаф, нагревающийся с помощью электричества и снабженный термометром. Обеззараживание материала в нем произво­дят, как правило, при 160 °С в течение 120 мин. Однако возможны и другие режимы: 200 °С - 30 мин, 180 "С - 40 мин.

Стерилизуют сухим жаром лабораторную посуду и другие изделия из стекла, инстру­менты, силиконовую резину, т. е. объекты, которые не теряют своих качеств при высокой температуре.

Большая часть стерилизуемых предметов не выдерживает подобной обработки, и поэтому их обеззараживают в паровых стерилизаторах.

Обработка паром под давлением в паровых стерилизаторах (старое название - «автокла­вы») является наиболее универсальным мето­дом стерилизации.

Паровой стерилизатор (существует множес­тво его модификаций) - металлический цилиндр с прочными стенками, герметически закрывающийся, состоящий из водопаровой и стерилизующей камер. Аппарат снабжен манометром, термометром и другими конт­рольно-измерительными приборами. В авто­клаве создается повышенное давление, что приводит к увеличению температуры кипения. Поскольку кроме высокой температуры на микробы оказывает воздействие и пар, споры погибают уже при 120 °С. Наиболее распростра­ненный режим работы парового стерилизатора: 2 атм - 121 °С - 15-20 мин. Время стерилиза­ции уменьшается при повышении атмосфер­ного давления, а следовательно, и температуры кипения (136 °С - 5 мин). Микробы погибают за несколько секунд, но обработку материала производят в течение большего времени, так как, во-первых, высокая температура должна быть и внутри стерилизуемого материала и, во-вторых, существует так называемое поле безопасности (рассчитанное на небольшую не­исправность автоклава).

Стерилизуют в автоклаве большую часть предметов : перевязочный материал, белье, коррозионно-устойчивые металлические инструменты, питательные среды, растворы, инфекционный материал и т. д.

Эффективность стерилизации в паровом стерилизаторе зависит от правильного вы­бора упаковки, соблюдения правил загрузки для свободного прохождения пара (например, перевязочный материал укладывают в камеру параллельно движению пара), плотности за­грузки камеры и других факторов.

Одной из разновидностей тепловой стери­лизации является дробная стерилизация, ко­торую применяют для обработки материалов, не выдерживающих температуру выше 100 "С, например, для стерилизации питательных сред с углеводами, желатина. Их нагревают в во­дяной бане при 80 "С в течение 30-60 мин, в результате чего вегетативные формы погибают. Процедуру повторяют три дня подряд, в про­межутках между манипуляциями питательные среды выдерживают в термостате, что способс­твует прорастанию спор. Иногда эту процедуру производят в автоклаве при давлении 0,5 атм.

В настоящее время применяют еще один метод тепловой стерилизации, предназначен­ный специально для молока - ультравысоко­ температурный (УВТ): молоко обрабатывают в течение нескольких секунд при 130-150 °С.

Тепловая стерилизация - наиболее надеж­ный, экологически безопасный, дешевый и хорошо контролируемый метод. Однако его невозможно применять тогда, когда предме­ты повреждаются от высокой температуры. В этих случаях прибегают к другим методам.

Химическая стерилизация предполагает ис­пользование токсичных газов: оксида этиле­на, смеси ОБ (смеси оксида этилена и бро­мистого метила в весовом соотношении 1:2,5) и формальдегида. Эти вещества являются алкилирующими агентами, их способность в присутствии воды инактивировать активные группы в ферментах, других белках, ДНК и РНК приводит к гибели микроорганизмов.

Стерилизация газами осуществляется в присутствии пара при температуре от 18 до 80 °С в специальных камерах. В больницах используют формальдегид, в промышленных условиях - оксид этилена и смесь ОБ.

Перед химической стерилизацией все из­делия, подлежащие обработке, должны быть высушены.

Этот вид стерилизации небезопасен для персонала, для окружающей среды и для па­циентов, пользующихся простерилизованными предметами (большинство стерилизующих агентов остается на предметах).

Однако существуют объекты, которые мо­гут быть повреждены нагреванием, например, оптические приборы, радио- и электронная аппаратура, предметы из нетермостойких по­лимеров, питательные среды с белком и т. п., для которых пригодна только химическая сте­рилизация. Например, космические корабли и спутники, укомплектованные точной ап­паратурой, для их деконтаминации обезв­реживают газовой смесью (оксид этилена и бромистого метила).

В последнее время в связи с широким рас­пространением в медицинской практике изде­лий из термолабильных материалов, снабжен-

ных оптическими устройствами, например эндоскопов, стали применять обезврежива­ ние с помощью химических растворов . После очистки и дезинфекции прибор помещают на определенное время (от 45 до 60 мин) в сте­рилизующий раствор, затем прибор должен быть отмыт стерильной водой. Для стерилизации и отмывки используют стерильные емкости с крышками. Простерилизованное и" отмытое от стерилизующего раствора изделие высушивают стерильными салфетками и по­мещают в стерильную емкость. Все манипу­ляции проводят в асептических условиях и в стерильных перчатках. Хранят эти изделия не более 3 суток.

Лучевая стерилизация осуществляется либо с помощью гамма-излучения, либо с помо­щью ускоренных электронов.

Источником гамма-излучения, получаемо­го в специальных гамма-установках, являются радиоактивные изотопы, например 60 Со, l 37 Cs. Для получения электронного излучения при­меняют ускорители электронов (с высоким уровнем энергии - 5-10 MeV).

Гибель микробов под действием гамма-лу­чей и ускоренных электронов происходит прежде всего в результате повреждения нук­леиновых кислот. Причем микробы более ус­тойчивы к облучению, чем многоклеточные организмы.

Лучевая стерилизация является альтернати­вой газовой стерилизации в промышленных условиях, и применяют ее также в тех случаях, когда стерилизуемые предметы не выдержи­вают высокой температуры. Лучевая стерили­зация позволяет обрабатывать сразу большое количество предметов (например, одноразо­вых шприцев, систем для переливания крови). Благодаря возможности широкомасштабной стерилизации, применение этого метода впол­не оправданно, несмотря на его экологичес­кую опасность и неэкономичность.

Еще одним способом стерилизации является фильтрование. Фильтрование с помощью раз­личных фильтров (керамических, асбестовых, стеклянных), а в особенности мембранных уль­трафильтров из коллоидных растворов нитроцеллюлозы или других веществ позволяет освободить жидкости (сыворотку крови, лекарства) от бак­терий, грибов, простейших и даже вирусов. Дли ускорения процесса фильтрации обычно создают повышенное давление в емкости с фильтруемой жидкостью или пониженное давление в емкости с фильтратом.

В настоящее время все более широкое при­менение находят современные методы стери­ лизации , созданные на основе новых техно­логий, с использованием плазмы, озона .

Микробиологический контроль объектов , подвергшихся стерилизации, в повседнев­ной практике не производится. Его заменяет косвенный контроль - контроль работы сте­рилизаторов, который осуществляется не­сколькими способами. Во-первых , персонал должен строго соблюдать и документировать установленный режим стерилизации, кото­рый обеспечивает гибель микробов. Во-вто­рых, косвенно о поддержании определенной температуры можно судить по изменению окраски химических индикаторов (либо ин­дикаторных бумажек, либо порошков, жид­костей - бензойной кислоты, мочевины, запаянных в ампулы), которые помещают на поверхности и в глубине стерилизуемого объекта. В-третьих , должен регулярно про­водиться технический контроль аппарату­ры соответствующей службой. В-четвертых , три раза в году осуществляют биологический контроль, помещая внутрь стерилизуемых предметов биотесты, приготовленные из тер­моустойчивых бацилл Вас. stearothermophilus ВКМ-718.

Для проведения микробиологического кон­троля п роизводят посев кусочков материала, смывов с предметов, подвергшихся стерили­зации, на среды, позволяющие обнаружить аэробные и анаэробные бактерии, грибы (са­харный бульон, тиогликолевую среду, сре­ду Сабуро). Отсутствие роста после 14 дней инкубации в термостате свидетельствует о стерильности предмета. Более тщательный контроль стерильности осуществляют в про­мышленных условиях, отбирая случайным методом некоторое количество образцов.

После процедуры стерилизации должна со­храняться стерильность, которую поддержи­вают с помощью упаковки: полимерной пленки, бумаги, фольги, биксов, металлических пеналов и др.

Существует общий стандарт для всех ви­ дов стерилизации, принятый Европейской Фармакопеей в 1983 г.: после завершения сте­ рилизации на лечебном материале может ос­таваться некоторое количество жизнеспособ­ ных микроорганизмов - 1 из 10 6 .

Дезинфекция

Дезинфекция (от франц. приставки des , обозначающей удаление, уничтожение ин­фекционного начала) - процедура, пре­дусматривающая обработку загрязненного микробами предмета с целью их уничтоже­ния до такой степени, чтобы они не смоли вызвать инфекцию при использовании дан­ного предмета. Как правило, при дезинфек­ции погибает большая часть микробов (в том числе все патогенные), однако споры и некоторые резистентные вирусы могут остаться в жизнеспособном состоянии.

Стерилизация - лучший способ обеззаражи­вания. Однако, если отсутствует возможность подвергнуть предмет стерилизации, проводится дезинфекция. Например, нельзя простерилизовать бокс, в котором ведутся работы с заразным материалом, операционный стол, руки хирурга или оптиковолоконные микроскопы.

После дезинфекции, в отличие от стери­лизации, нет необходимости защищать про­дезинфицированный материал от попадания микробов извне. До стерилизации предмет необходимо тщательно отчистить от грязи, крови, химических веществ (в том числе и ле­карств) и вымыть, чтобы сократить количес­тво микробов на нем. Дезинфекция нередко выполняется перед процедурой чистки для обеспечения безопасности медперсонала.

Различают три основных метода дезинфек­ ции :

    тепловой,

    химический,

    УФ-облучение.

Выбор того или иного метода также зависит от дезинфицируемого материала.

Тепловая дезинфекция . Очень эффективным является действие горячей воды и насыщен­ного пара. Рекомендуется следующее время воздействия: при 80 "С - 10 мин, при 85 "С - 3 мин, при 90 °С - 1 мин. При этом режиме погибают все вегетативные формы бактерий и большинство вирусов. Температура 100 °С в течение 5 мин убивает все вегетативные фор­мы бактерий и все вирусы.

При добавлении в воду 2 % натрия гид­рокарбоната (NaHCO 3) погибают и споры. Кроме того, добавление соды имеет дополни­тельные преимущества: сода растворяет белки и жиры, которые могут находиться на повер­хности предмета, предупреждает коррозию инструментов и оседание на них кальция. Подобным образом можно обрабатывать инс­трументы, иглы, шприцы и т. д.

Более удобным является применение авто­ матических моечных машин, в которых пред­меты сначала промываются в холодной воде, затем - в теплой с детергентом, далее - в чистой и, наконец, дезинфицируются в дис­тиллированной воде при 90 °С.

Обычные процессы стирки белья, приго­товление пищи и кипячение питьевой воды являются примером использования дезин­фекции в быту.

Для дезинфекции применяют также сухое тепло, например, прокаливание.

Тепловая дезинфекция - это единствен­ный метод, который не вызывает загрязнения окружающей среды; кроме того, он является наиболее эффективным и дешевым.

Разновидностью тепловой дезинфекции яв­ляется пастеризация - метод, созданный Л. Пастером и применяемый для обработки в основном молока, а также соков, вина и пива. При используемом обычно режиме - 60-70 °С в течение 20-30 мин - погибает большинство вегетативных форм бактерий (особенно важно уничтожение бруцелл и Mycobacterium bovis , которые могут находиться в молоке), но сохра­няется часть энтерококков, молочнокислых бактерий и споры. Поэтому пастеризованное молоко помещают на холод для предотвра­щения и прорастания спор и размножения бактерий.

Химическая дезинфекция проводится с помо­щью различных дезинфицирующих веществ. Дезинфектанты действуют, например, раство­ряя липиды клеточных оболочек (детергенты) или разрушая белки и нуклеиновые кислоты (денатураты, оксиданты). Активность каждо­го из дезинфектантов неодинакова для различных микроорганизмов и зависит от темпе­ратуры, рН и прочих условий.

В качестве контрольных микроорганизмов для изучения действия дезинфектантов ис­пользуют S . typhi и S . аигеш.

Обеззараживанию с помощью данного ме­тода подлежат, например, поверхность опе­рационного стола, стены процедурного ка­бинета, кожа, некоторые инструменты - все то, что невозможно обработать теплом. Еще одним примером химической дезинфекции является хлорирование воды.

Использование большинства дезинфициру­ющих веществ опасно для медперсонала, они загрязняют окружающую среду, многие из них дорогостоящи.

Ультрафиолетовое облучение (лучи с длиной волны 200-400 нм) производится с помощью специальных бактерицидных ламп (настен­ных, потолочных, передвижных и др.) для обеззараживания воздуха, различных поверх­ностей в операционных, перевязочных, мик­робиологических лабораториях, предприяти­ях пищевой промышленности и т. д. Действие ультрафиолетовых лучей приводит к разруше­нию ДНК микробов в результате образования тиминовых димеров.

Очень незначительна роль механической дезинфекции : проветривания, вентиляции, обработки пылесосом и т. п.

Различают профилактическую дезинфек­ цию в эпидемическом очаге, которая осущест­вляется с целью предупреждения распростра­нения различных болезней. При возникнове­нии эпидемического очага проводят текущую (во время вспышки) и заключительную (пос­ле ее окончания) дезинфекцию; подобные процедуры проводятся как в медицинских учреждениях, так и за их пределами.

Асептика и антисептика

Для профилактики внутрибольничных, и в особенности хирургических, инфекций при­меняют асептику и антисептику.

Асептика , основоположником которой явля­ется Д. Листер (1867), - это комплекс мер, направленных на предупреждение попадания возбудителя инфекции в рану, органы больно­го при операциях, лечебных и диагностических процедурах. Методы асептики применяют для

борьбы с экзогенной инфекцией, источниками которой являются больные и бактерионосители.

Асептика включает :

    стерилизацию и сохране­ние стерильности инструментов, перевязочного материала, операционного белья, перчаток и всего, что приходит в соприкосновение с раной; дезинфекцию рук хирурга, операционного поля, аппаратуры, операционной и других помеще­ний, применение специальной одежды, масок.

    К мерам асептики относится также планировка операционных (этаж, боксирование, вентиля­ция, кондиционирование воздуха и т. п.).

Методы асептики находят также примене­ние в микробиологических производствах, на предприятиях пищевой промышленности.

Антисептика - совокупность мер, направ­ленных на уничтожение микробов в ране, па­тологическом очаге или организме в целом, на предупреждение или ликвидацию воспалитель­ного процесса.

К физическим методам дезинфекции относят механические, термические, лучистые и радиоактивные способы.

Физический метод дезинфекции представляет собой кипячение, обработку паром и горячим воздухом, и также ультрафиолетовое облучение. Физическая дезинфекция лучше всего выходит при кипячении, которое полностью убивает все микроорганизмы. Исключением являются некоторые разновидности бактериальных спор. Однако, если после кипячения применить иные методы дезинфекции, то можно достигнуть лучшего результата.

Механические методы дезинфекции

Механические методы дезинфекции - чистка, влажная уборка, мытье, стирка, выколачивание, вытряхивание, фильтрация, вентиляция. Эти способы обеспечивают в основном удаление, а не уничтожение микроорганизмов. При проветривании помещений в течение 15-30 мин через форточки, фрамуги, окна количество патогенных микроорганизмов в воздухе резко уменьшается, так как воздух помещения практически полностью замещается наружным. Однако проветривание (вентиляция) не всегда являются надежными дезинфекционными мероприятиями и рассматриваются как подсобная мера при условии продолжительности не менее 30-60 мин.

Термические способы дезинфекции

Термические способы - включают использование высоких температур, которые вызывают гибель микроорганизмов в результате коагуляции белка .

Обжигание и прокаливание - применяют для обеззараживания в бактериологической практике, а также в отдельных случаях на пищевых предприятиях для обработки металлических объектов.

Кипячение в течение 15-45 мин используют для обеззараживания воды, готовой пищи и др.

Кипящая вода (100 °С) - одно из самых простых и эффективных средств обеззараживания. Большинство вегетативных форм микроорганизмов погибают в ней в течение 1-2 мин. Этот способ широко применяется для обеззараживания посуды, инвентаря, оборудования.

Очень важно помнить, применяя такие физические методы дезинфекции как кипячение, что температура, при которой начинается кипение воды снижается по мере увеличения высоты над уровнем моря. А это значит, что при этом необходимо увеличивать время кипячения. Например, если вы кипятите на высоте 4 километров над уровнем моря, то вам потребуется минимум 20 минут для дезинфекции. Важно отметить и то, что кипячением нельзя достигнуть стерилизации.

Горячая вода (от 60 до 100 °С) - часто используется с растворенными моющими средствами при стирке и уборке. Многие патогенные вегетативные формы микроорганизмов не выдерживают нагревания при 80 °С свыше 2,5 мин, а большинство из них погибают при температуре 60-70 °С в течение 30 мин.

Пастеризация - прогревание пищевых продуктов при температуре 65-90 °С. Экспозиция зависит от температуры и колеблется от нескольких секунд до 30 мин. В этих условиях гибнут вегетативные формы микробов и остаются споры. Например, моментальная пастеризация проводится при 90 °С в течение 3 сек.

Водяной пар - при превращении в воду выделяет большую скрытую теплоту парообразования, обладает большой проникающей способностью и бактерицидным эффектом. Используется водяной пар для обработки фляг, цистерн, танков и т. п.

Горячий воздух применяют в воздушных стерилизаторах для обеззараживания посуды, столовых приборов, кондитерского инвентаря, инструментов. Горячий воздух по эффективности уступает пару, так как оказывает в основном поверхностное действие.

Глажение санитарной одежды, столовых скатертей, салфеток и др. белья горячим утюгом при температуре 200-250 ° С приводит к гибели вегетативных форм микробов и обеззараживанию тканей.

Сжигание - обеззараживание твердых отходов, опасной пищи, трупов животных больных сибирской язвой и т. д.

Холод . Установлено, что искусственное замораживание патогенных возбудителей до - 270 °С, т. е. до температуры, близкой к абсолютному нулю, не приводит к их гибели. Однако с течением времени количество микроорганизмов, находящихся в замороженном состоянии, снижается. Низкие температуры широко используются как консервирующее средство в пищевой промышленности, но в дезинфекционной практике холод не находит применения.

Лучистые способы дезинфекции

Лучистые способы - облучение различными бактерицидными лучами, действие ультразвука , токов ультравысокой частоты (УВЧ), а также сверхвысокочастотного облучения (СВЧ), радиоактивного излучения, высушивание и т. д., которые при определенных параметрах оказывают бактерицидное действие.

Солнечный свет, ультрафиолетовые лучи используют для снижения бактериальной обсемененности воздуха и различных поверхностей. Ультрафиолетовые лучи получают с помощью специальных бактерицидных ламп. Промышленность выпускает настенные, потолочные, стационарные, передвижные и комбинированные ультрафиолетовые установки различной мощности излучения, которые применяются в микробиологических лабораториях и на некоторых пищевых предприятиях (в кондитерском производстве, холодных цехах и т. д.).

Ультразвук. Под действием ультразвука происходит разрыв клеточной стенки микроорганизмов, приводящий к гибели клетки. Ультразвуком обрабатывают воду, фруктовые соки и др.

Высушивание. Многие патогенные микроорганизмы под влиянием длительного высушивания погибают. Скорость отмирания зависит от вида возбудителя.

Помимо термической обработки применялись спиртосодержащие дезинфектанты, которые обладали не только достаточно хорошей способностью к эффективному обеззараживанию, но и очень важной характеристикой - гипоаплергенностью. Для жестких газопроницаемых контактных линз (ЖГКЛ), имеющих некоторые особые свойства, потребовался более тщательный уход.

Все методы дезинфекции контактных линз делятся на термические (например, обработка линзы в устойчивой к температурным воздействиям емкости на водяной бане при температуре 80 °С) и химические (активное вещество и нейтрализатор или многокомпонентные рецептуры). У каждого из них свои преимущества и недостатки: термические методы просты и экономичны, но существенно влияют на полимер и характеристики линзы; химические методы эффективны в отношении не всех микроорганизмов и могут вызывать токсикоаплергические реакции со стороны тканей поверхности глаза при длительном применении. Ведущие производители КЛ и фармакологические компании разработали достаточно много средств для ухода за линзами. К таким средствам относятся:

  • многофункциональные растворы (МФР);
  • одно- и двухступенчатые пероксидные системы очистки;
  • контейнеры для хранения;
  • ферментные очистители;
  • растворы для ополаскивания линз;
  • растворы для замачивания (химические дезинфектанты, в основном предназначенные для ЖГКЛ);
  • смазывающие капли;
  • увлажняющие капли.

В каждом конкретном случае выбор средства определяется с учетом не только типа линз и режима ношения, но также и индивидуальных особенностей пациента. Сегодня, когда носителям МКЛ хорошо известна идея частой плановой замены линз, можно предположить, что средства для ухода за линзами становятся побочным продуктом индустрии контактной коррекции зрения, и по прогнозам аналитиков рынка оптической индустрии медленно, но неуклонно снижается потребность в них. Однако этот естественный процесс оказался согласно анализу продаж МФР в последние годы чрезвычайно замедленным и ни в коей мере не умаляет актуальность основных требований к дезинфекции и соблюдению правил ухода за КЛ. Осведомленность об основных компонентах МФР обеспечивает специалисту возможность анализировать и прогнозировать пригодность каждой дезинфицирующей системы для определенного пациента.

Этапы ухода за контактными линзами

В технологическом регламенте процесса производства КЛ предусмотрена стандартная процедура стерилизации перед упаковкой в блистеры. Обычно стерилизация осуществляется в автоклаве при температуре 115-118 °С на протяжении 30 мин. В настоящее время все чаще используется стерилизация МКЛ физическим способом, в частности при помощи коротковолнового УФ-излучения.

Основные этапы ухода за линзами:

  • удаление загрязнений и отложений;
  • ополаскивание;
  • дезинфекция;
  • увлажнение;
  • хранение.

Удаление загрязнений и отложений

При ношении на поверхности КЛ могут образовываться отложения компонентов слезы, органических и неорганических субстанций, попавших в СП. Известны следующие виды отложений:

  • протеиновые;
  • липидные;
  • гелеобразные;
  • кальцификаты;
  • неорганические;
  • отложения солей железа;
  • прочие.

Удаление отложений и загрязнений, образовавшихся на поверхности КЛ, представляет собой первый этап обработки. Для механической очистки линзу обычно располагают на ладони, поверхность линзы омывают раствором и подушечкой ладонной поверхности концевой фаланги другой руки совершают легкие круговые движения по поверхности линзы. Для орошения линзы чаще используют МФР. Ранее применялись физиологический раствор или специальные средства, в состав которых входил очиститель (полоксамер 407, изо-пропиловый спирт или микрочастицы, оказывающие абразивное действие); эти препараты чаще используются для обработки ЖКЛ. Из СП протеины могут проникать в матрицу полимера МКЛ и адсорбироваться на их поверхности. С течением времени протеиновые отложения образуют крепкие связи с поверхностью линзы и переходят в денатурированное состояние. Удаление протеиновых отложений возможно до тех пор, пока они не перешли в денатурированное состояние, когда ферменты уже не способны разрушать молекулярные связи. Именно поэтому необходимо регулярно проводить очистку КЛ. Следовательно, снижаются комфортность ношения линз, качество зрения и общая удовлетворенность пациента средством коррекции зрения; способны развиваться такие осложнения, как гиперемия конъюнктивы и/или гигантоклеточный папиллярный конъюнктивит. Протеиновые отложения чаще встречаются на поверхности гидрогелевых КЛ и реже - на силикон-гидрогелевых линзах. Первоначально для борьбы с протеиновыми отложениями применяли специальные способы. Таблетки для удаления белка чаще всего содержат субтилизинпротеиназу, разрушающую белки, и позволяют разрушить молекулярные связи, после чего белковые отложения смываются с поверхности линзы. Ферментная таблетка растворяется в МФР, затем линза помещается в эту среду на 10-15 мин. Затем нужно извлечь линзу, тщательно промыть в чистом МФР и снова опустить в дезинфицирующий раствор еще на 4-6 ч. При использовании КЛ плановой замены нет необходимости проводить данную процедуру, поскольку МФР вполне справляются с поверхностной очисткой. В состав МФР добавляют компоненты, содействующие удалению протеинов, например этилендиаминтетраацетат (ЭДТА). Благодаря этим химическим агентам отдельные препараты для удаления протеинов используются все реже и реже. Многие пациенты часто пренебрегают этапом механической очистки. Отчасти это связано с тем, что в свое время выросла популярность растворов с пометкой No rub, применение которых не предполагает механической очистки линз. Производители изменили состав растворов таким образом, чтобы микрофлору можно было уничтожить и без механической очистки. Однако специалисты стали выражать сомнения относительно их безопасности, особенно в тех случаях, когда используются силикон-гидрогелевые МКЛ, на которых в больших объемах образуются липидные, а не протеиновые отложения. В настоящее время длительная полемика по поводу целесообразности проведения механической очистки закончилась однозначным решением экспертных органов: механическая обработка линзы необходима.

Ополаскивание

Ополаскивание линзы свежим раствором является необходимым этапом процедуры ухода за линзами, его обязательно проводят после механической очистки. Во время очистки и последующего ополаскивания с поверхности линзы смывается до 90% микроорганизмов. Очистка в сочетании с ополаскиванием особенно важна при подозрении на инфицирование линзы цистами или трофозонтами акантамебы. При ополаскивании удаляются субстанции, нестойко адсорбировавшиеся к поверхности контактных линз, остатки очистителя, избыток которого в полимерном материале линз может привести к ощущению дискомфорта при их надевании. Для достижения требуемого эффекта необходимо потратить больше времени, чем отводят на эту процедуру подавляющее число пациентов.

Методы дезинфекции контактных линз

Глаз обладает собственной защитной системой, которая подавляет рост патогенных микроорганизмов и удаляет различные инородные тела.

Этому содействуют следующие факторы:

  • постоянная температура тканей глазной поверхности;
  • вымывающее действие тока слезы;
  • наличие бактерицидных компонентов в составе слезы;
  • регулярное моргание (каждые 5-6 с);
  • целостность эпителия роговицы.

При ношении КЛ многие из перечисленных факторов нарушаются. При дезинфекции происходит уничтожение зрелых форм микроорганизмов, но не всегда погибают споровые формы, вот почему дезинфекция - важнейший этап ухода за жесткими и мягкими КЛ. В настоящее время действует стандарт, получивший обозначение ISO 14729. В этом документе определены требования к дезинфицирующей активности препарата по отношению к трем видам бактерий и двум видам грибов. Дезинфицирующий раствор также должен обеспечивать отсутствие микрофлоры при хранении линз. Вещества, используемые для дезинфекции, обычно выступают и в роли консервантов, которые предупреждают рост числа микроорганизмов в растворе, хранящемся в открытой упаковке. Известны два способа дезинфекции МКЛ: термический и химический.

Термическая дезинфекция

Термическая дезинфекция - первый и достаточно надежный способ обработки МКЛ, который не имел альтернативы до середины 1970-х гг. Высокая температура (около 80 °С) приводит к гибели микроорганизмов, она вызывает денатурацию компонентов их клетки и разрушает ДНК. Средой для термического нагрева является изотонический солевой раствор для хранения КЛ. Процедуру также можно проводить в специальном термостате с системой автоматического выключения.

Преимущества:

  • эффективное действие высоких температур выражается в том, что погибают практически все микроорганизмы, за исключением цист акантамебы;
  • экономичный способ ухода за КЛ.

Недостатки:

  • процент содержания воды уменьшается, МКЛ подвергаются дегидратации, поэтому нельзя проводить термическую обработку линз со средним и высоким содержанием влаги;
  • белковые отложения на поверхности КЛ подвергаются денатурации, это становится причиной образования нерастворимых комплексов чужеродного организму белка и провоцирует возникновение аллергических реакций;
  • внешний вид МКЛ изменяется: появляются желтизна и нерастворимые налеты на поверхности;
  • пациент должен проявлять внимательность и не жалеть времени на обработку МКЛ.

Поскольку у термической дезинфекции МКЛ недостатков значительно больше, чем достоинств, в настоящее время она применяется очень редко. Силикон-гидрогелевые КЛ не рекомендуется подвергать термической обработке.

Химическая дезинфекция

Соответствующие системы для ухода за линзами появились и получили признание в 1980-х гг. В процессе дезинфекции происходит химическое повреждение микроорганизма. Для этих целей выбираются специфические дезинфицирующие агенты со слабыми токсическими свойствами и избирательным воздействием на белки и клеточные мембраны микроорганизмов. В качестве дезинфицирующих агентов используют:

  • 3% перекись водорода;
  • соединения четвертичного аммония NH 4 + (в составе МФР);
  • бигуаниды (в составе МФР);
  • ртутьорганические соединения.

Пероксидные системы очистки

«Золотым стандартом» химической дезинфекции МКЛ считается использование 3% раствора H 2 O 2 . По химической природе это достаточно токсичное вещество, поэтому после воздействия на линзу спустя некоторое время следует удалить раствор. Для того чтобы избавиться от остатков действующего вещества, используется метод нейтрализации с помощью платины или каталазы. Его суть заключается в дезактивации этого соединения и его химическом разложении на воду и кислород.

Одноэтапный способ дезинфекции МКЛ предусматривает применение специальных, промышленно выпускаемых систем, которые содержат 3% водный раствор H 2 O 2 и снабжены специальным контейнером с нейтрализатором. В специальный контейнер наливается 3% раствор вещества, пока он не достигнет метки. Внутри контейнера находится платиновый элемент. КЛ помещаются в чашечки линзодержателя, который опускается в стаканчик контейнера. Крышка контейнера плотно закрывается, однако в ней есть специальное отверстие для выхода кислорода, образующегося в ходе химической реакции нейтрализации действующего дезинфектанта. В таком состоянии КЛ остаются в контейнере на 6 ч. Этого времени достаточно для дезинфекции и полного разложения H 2 O 2 . Существуют и другие одноэтапные пероксидные системы, где катализатором является каталаза.

Двухэтапный способ дезинфекции предполагает использование определенных компонентов:

  • 3,0% водного раствора H 2 O 2 ;
  • 2,5% водного раствора тиосульфата натрия;
  • 0,9% изотонического раствора.

Сначала линзы помещаются в емкость с пероксидом водорода на 20 мин, затем в сосуд с раствором тиосульфата натрия на 20 мин, далее в контейнер с изотоническим раствором хлорида натрия на 5-6 ч. Можно утверждать следующее: чем проще и удобнее система по уходу, тем выше вероятность того, что пациент будет правильно ухаживать за линзами, не нарушая основных требований, изложенных в аннотации к раствору, или рекомендаций врача. Сложность соблюдения хронологии действий при дезинфекции линз с помощью многоступенчатых пероксидных систем импонирует не всем пациентам, однако когда были разработаны более удобные одноступенчатые системы, у них обнаружилась более низкая бактерицидная эффективность, поскольку сократилось время нахождения линзы в растворе H 2 O 2 . Рассматриваемые средства могут влиять на параметры КЛ, которые чувствительны к изменениям рН. Например, пребывание в таком растворе может вызывать уменьшение диаметра и радиуса базовой кривизны задней поверхности МКЛ из ионных материалов. Такие изменения обратимы, но для этого потребуется до 60 мин после нейтрализации H 2 O 2 . Если надевать линзы после нейтрализации в течение 20 мин, то примерно в 20% случаев пациенты будут ощущать дискомфорт. Для того чтобы посадка линзы стала обычной, потребуется примерно час.

Недостатки:

  • пациент должен быть очень внимательным при использовании пероксидной системы;
  • нельзя закапывать H 2 O 2 в конъюнктивальную полость и промывать ею КЛ;
  • если применяется средство с истекшим сроком годности, может произойти неполная нейтрализация H 2 O 2 ;
  • остатки H 2 O 2 на КЛ способны вызвать жжение или небольшую токсическую реакцию;
  • требуется определенное время для завершения процесса нейтрализации H 2 O 2 ;
  • не все системы имеют индикатор, указывающий на окончание нейтрализации.

Увлажнение

Увлажняющие растворы первоначально были разработаны для улучшения комфортности ношения ЖКЛ. Основные цели применения таких растворов:

  • минимизация дискомфорта;
  • содействие равномерному распределению слезы под линзой;
  • создание пленки между поверхностью линзы и кожей пальца при надевании линзы для снижения вероятности ее загрязнения.

Эффект, достигаемый с помощью увлажняющего раствора, отличается кратковременностью: он проходит примерно через 15 мин при ношении ЖКЛ. Появление силикон-гидрогелевых МКЛ привело к тому, что в состав МФР стали включать увлажняющие агенты. Поверхностно активные вещества добавляют в МФР в целях ускорения очистки поверхности линзы от загрязнений и отложений, а также для повышения комфортности линзы при ношении за счет улучшения ее смачиваемости.

Хранение

Хранение - один из существенных компонентов ухода за линзами, при этом важны характеристики раствора, который не только определяет качество очистки, дезинфекции и увлажнения, но и влияет на физико-химические параметры линзы. Большое значение в процессе дезинфекции КЛ при хранении имеет контейнер, а точнее материал и состояние поверхности его резервуаров.

Характеристики растворов и их влияние на контактные линзы

Поскольку средства для ухода за КЛ контактируют с тканями глаза, необходимо, чтобы они были сбалансированы по своим свойствам, не представляли опасности для здоровья пациента и содействовали комфортности ношения линз. Для специалиста очень важно иметь представление об основных свойствах растворов, тогда, в случае возникновения проблем у пациента, врач будет понимать, какой альтернативный раствор можно назначить. Свойства и эффективность растворов со временем меняются. Среднее значение осмолярности слезы человека составляет около 325 ммоль/кг и варьирует в пределах 330-350 моль/кг. Аналогичное значение данного показателя имеет 0,9% раствор хлорида натрия. Средства для ухода за КЛ должны обладать такой же осмолярностью. Если у раствора значение данного показателя выше, чем у слезы, комфорт при использовании линз снижается и может развиться гиперемия конъюнктивы. Дискомфорт и гиперемия являются ранними признаками, предшествующими повреждению роговицы. С точки зрения осмолярности вода является гипотоническим раствором. В воде КЛ набухают, что приводит к разрыву полимерных цепей в материале, к стойкой деформации линзы и потере ее свойств. МКЛ нельзя хранить в воде. Следует заметить, что поведение линз в дистиллированной воде зависит от природы полимера, из которого они изготовлены. У МКЛ из неионных материалов набухание в воде выражено очень слабо. Наоборот, те, что изготовлены из ионных материалов, могут набухать весьма значительно. Однако при длительной экспозиции в воде, когда система «полимер - вода» приходит в равновесное состояние, размеры МКЛ из ионных материалов оказываются даже меньше исходных. Во избежание подобных трансформаций для хранения и дезинфекции МКЛ следует использовать растворы, которые содержат буферные добавки, обеспечивающие поддержание рН на необходимом уровне. Для достижения комфортности ношения МКЛ нужно, чтобы значение рН раствора находилось в пределах 6,60-7,80 и было как можно ближе к значению рН слезы (7,10±0,16). В человеческом глазу имеются буферные системы, способные возвращать рН слезы к нормальному значению. Слеза может смешиваться с раствором, рН которого находится вне указанного интервала. Однако возникающий при этом дискомфорт свидетельствует о том, что лучше использовать раствор со значением рН, соответствующим аналогичному показателю слезы. Значения рН варьируют у разных марок растворов. Традиционно используемые в растворах буферные вещества - бораты и фосфаты. Очень кислые или щелочные среды также способны влиять на состояние химических связей в полимере, вызывая изменение степени ионизации функциональных групп или гидролиз сложноэфирных групп, входящих в состав макромолекул. В кислых растворах МКЛ из ионных материалов коллапсируют вследствие превращения карбоксилатанионов в слабо ионизированные карбоксильные группы. В щелочных растворах сложноэфирные группы 2-гидрокси-этилметакрилата (основного мономера, входящего в состав большинства полимеров для МКЛ) подвергаются гидролизу, и образуются ионные функциональные группы, вызывающие дополнительное набухание гидрогеля. Этот эффект можно использовать для получения КЛ большого диаметра и их последующего применения в терапевтических целях.

Дезинфицирующие агенты

В связи с тем, что после нарушения герметичной упаковки любой раствор становится уязвимым для заражения микрофлорой, в средства для ухода за линзами (если упаковка не одноразовая) добавляют консерванты. Их главная задача - уничтожение микроорганизмов, попадающих в раствор. Химические вещества, которые применяются в качестве пассивных консервантов, можно использовать и в дезинфицирующих растворах. Мишени для воздействия большинства дезинфицирующих агентов - мембраны микроорганизмов. К сожалению, они не обладают способностью к селективному воздействию и одинаково отрицательно влияют и на мембраны клеток эпителия. Вязкость регулируется с помощью специальных агентов, которые позволяют контролировать стабильность раствора. Чаще всего с этой целью используется гидроксипропилметилцеллюлоза. Ее добавляют в увлажняющие капли для увеличения времени контакта увлажняющего агента с линзой, а также в препараты искусственной слезы для повышения продолжительности достигаемого эффекта. Таким образом, МКЛ следует хранить в изотоническом растворе. Для сохранения физических свойств МКЛ, находящейся не на глазу, используются солевые растворы, соответствующие слезной жидкости по ионному составу.

Состав растворов для хранения линз

Солевые растворы применяются в следующих случаях:

  • хранение КЛ;
  • термическая дезинфекция;
  • ополаскивание после очистки и дезинфекции КЛ;
  • растворение ферментных препаратов в виде таблеток;
  • увлажнение и промывка глаз.

В настоящее время использование солевых растворов для хранения линз ограничено, так как основными средствами, предназначенными для хранения и дезинфекции КЛ, являются МФР.

Многофункциональные растворы

МФР значительно облегчают уход за КЛ. По своему составу они во многом близки солевым растворам для хранения линз, но спектр их функций шире. Кроме того, они используются для дезинфекции, поверхностной очистки и увлажнения КЛ.

Консерванты - вещества, обладающие антибактериальными или бактериостатическими свойствами. К ним относятся:

  • сорбиновая кислота;
  • аммониевые соединения (хлорид бензалкония, поликватерниум-1);
  • бигуаниды (хлоргексидин, полигексаметиленбигуанид, полиаминопропилбигуанид);
  • ртутьорганические соединения (тимеросал).

Сорбиновая кислота - слабый консервант, антибактериальные свойства которого требуют усиления, например с помощью эти-лендиаминтетраацетата (ЭДТА), который обладает синергизмом в сочетании с разными консервирующими веществами. Он менее токсичен для глаза по сравнению с бигуанидами.

Поликватерниум-1 (поликвад) - аммониевое соединение с длинной полимерной цепью (22,5 нм). Поскольку размер поры гидрогеля около 3,0-5,0 нм, полимерная молекула почти не проникает в структуру материала КЛ, соответственно, консервант не накапливается в нем и в дальнейшем не оказывает токсического воздействия на роговицу и другие ткани глаза. Благодаря значительному размеру молекулы поликватерниума-1, с одной стороны, обеспечивается ее большая поверхностная активность и возможность применения низкой концентрации этого вещества в составе МФР, а с другой - возникает препятствие при взаимодействии с некоторыми микроорганизмами. При применении таких МФР рекомендуется обрабатывать КЛ не менее 6 ч.

Хлоргексидин - один из первых бигуанидов. Вследствие малых размеров реакционноспособных групп действие хлоргексидина ограничивается наружной частью клетки. К его недостаткам относят ограниченное воздействие на грибки, из-за чего этот бигуанид раньше часто использовался в сочетании с тимеросалом. В некоторых случаях частое применение хлоргексидина вызывает раздражение глаза.

Полигексаметиленбигуанид (полигексанид) входит в число самых распространенных бигуанидов, используемых в качестве консервантов в солевых и МФР.

Полиаминопропилбигуанид даймед - высокомолекулярное полимерное соединение, которое содержит большое количество бигуанидных групп. Молекула размером около 15 нм примерно в 2-3 раза больше пор КЛ. Ее структура идентична фосфолипидам плазматической мембраны бактериальной клетки, с которыми она взаимодействует. Это приводит к повреждению их мембраны и гибели клеток. Вещество особенно активно в отношении грамотрицательных бактерий.

Тимеросал - органическое соединение ртути, которое действует путем связывания сульфидгидридных групп специфических протеинов и ферментов микроорганизмов, вызывая их гибель. В низких концентрациях тимеросал нетоксичен. Для более эффективного воздействия на микроорганизмы он используется в сочетании с хлоргексидином. Однако такое соединение отличается большей токсичностью и провоцирует гиперчувствительность. Применение средств с тимеросалом приводит к развитию ощущения сухости глаз у некоторых пациентов. Минимальное время дезинфекции МКЛ в МФР, содержащем консервант из группы бигуанидов, составляет 4 ч; если в качестве консерванта задействовано аммониевое соединение - 6 ч.

Поверхностно-активные вещества (ПАВ) - амфифильные химические вещества. Если гидрофильная часть молекулы представляет собой катион или анион, то ПАВ является ионным. К ионным ПАВ относятся часто применяемые хлорид бензалкония и лаурилсульфат натрия. Если гидрофильная часть ПАВ представляет собой полярную группу (обычно это несколько звеньев этиленоксида), то ПАВ оказывается неионным. Примерами неионных ПАВ являются различные вещества из группы плюроников. Неионные ПАВ существуют в виде нейтральных молекул, поэтому они менее токсичны и чаще используются в МФР. Моющее действие ПАВ зависит от комплекса свойств их растворов, как поверхностных, так и объемных (мицеллообразование, солюбилизация). Как правило, ПАВ предназначены для того, чтобы удалять с поверхности МКЛ гидрофобные вещества (липиды и некоторые белки). ПАВ сорбируются на поверхности МКЛ вследствие гидрофобных взаимодействий углеводородных радикалов и загрязняющих гидрофобных органических веществ (например, липидов). Молекулы ПАВ обволакивают загрязняющие вещества, преобразуя их в микрокапли, которые при легком механическом воздействии удаляются с поверхности МКЛ. Благодаря присутствию в растворе мицелл ПАВ происходит дальнейшее эмульгирование микрокапель и их стабилизация (углеводородные радикалы находятся в объеме микрокапель, а полярные головки - на поверхности). ПАВ эффективны в отношении липидных отложений и слабосвязанного белка, они способствуют удалению и неорганических отложений.

Гиалуроновая кислота - естественное увлажняющее вещество нашего организма, содержится во многих тканях человека: кожа, синовиальная жидкость суставов, роговица и ее эпителий, конъюнктива, слезная пленка, стекловидное тело. Гиалуроновая кислота используется в косметологии, травматологии и ортопедии,витреоретинальной и катарактальной глазной хирургии, при лечении синдрома сухого глаза. Гиалуронат натрия образует рыхлую сеть на поверхности контактной линзы, создавая равномерную увлажняющую «подушку», обладает самой высокой гигроскопичностью: удерживает огромное количество воды на поверхности линзы. Использование гиалуроната снижает испарение воды с поверхности линзы, сохраняет активность в сухой атмосфере и под воздействием UV, стабилизирует слезную пленку и белки слезы, уменьшает трение и защищает эпителий роговицы.

Контейнер

Для хранения КЛ используются контейнеры, изготовленные из полимерных материалов. Современные МФР содержат высокомолекулярные увлажняющие компоненты, частицы которых остаются на стенках контейнера, что повышает вероятность бактериальной обсемененности последнего.

В качестве примера следует назвать несколько видов бактерий и указать, какое негативное влияние они оказывают на состояние контейнеров и линз:

  • S. aureus - очень распространенный микроорганизм, живущий на коже; часто является причиной глазных инфекций, встречается в 70% контаминированных контейнеров;
  • P. aeruginosa - самая частая причина возникновения микробных кератитов, размножается в водной среде;
  • Serratia marcescens - очень распространенный микроорганизм, встречается на коже, в капельках воды на различных поверхностях, часто является причиной глазных инфекций.

Некоторые производители предлагают антимикробные контейнеры, в материал которых встроены ионы серебра. Они обладают бактерицидным и бактериостатическим эффектом.

Общая тенденция совершенствования средств по уходу за МКЛ: уменьшение токсичности, увеличение бактерицидной активности и повышение комфорта при использовании МКЛ.

Ежегодно в качестве приложения к журналу «Вестник оптометрии» издается справочное пособие по средствам по уходу за МКЛ, в котором перечислены все МФР, допущенные к применению на территории РФ, в виде таблиц отражены их химический состав и особенности использования.


Для стерилизации химическими веществами используют эмалированные или пластмассовые ёмкости с плотно закрываюшимися крышками. Изделия, подлежащие стерилизации, свободно раскладывают в емкости - раствором, расправляют их. При большой длине изделия, его укладывают по спирали. Изделие полностью погружают в раствор.
После стерилизации химическими веществами предметов медицинского назначения, их укладывают стерильным корнцангом в стерильный бикс, выложенный стерильной салфеткой. 3акрывают бикс, маркируют. Срок хранения - не более 3-х суток.
Внимание! 6% раствор перекиси водорода и 1% раствор Дезоксон-1 повторно использовать для стерилизации изделий медицинского назначения нельзя!
Периодически 1 раз в 2 недели проводят чистку инструментов. Готовят реактив из:

  • NaCl- l гр;
  • ледяная кислота - 5 грамм;
  • дистиллированной воды - 100 мл.

Приготовление 0,5% раствора перекиси водорода

Способы приготовления:
  • Из препарата гидроперит нужно развести 12 таблеток на литр воды - в итоге получаем 0,5 раствор перекиси водорода
  • Из препарата пергидроль концентрацией 29-30% растворяем в литре воды
  • 100 мл 6%-процентного перекиси водорода растворяем в 1000 мл воды
  • 200 мл 3%-процентного перекиси водорода растворяем в 1000 мл воды
Примечание. Раствор используется для предстерилизационной очистки инструментов с добавлением моющего средства: из расчета 5 г на 1 л 0,5% перекиси водорода.
Моющий раствор допускается применять до загрязнения (до появления розовой окраски, что свидетельствует о загрязнении раствора, снижающей эффективность очистки). Неизмененный
раствор можно подогревать 6 раз до температуры 450-500 с.
В процессе подогрева концентрация переписи водорода существенно не изменяется. В моющем растворе каждый предмет. медицинского назначения моется в течение 0,5 минуты с помощью ерша или щетки

Стерилизация предметов медицинского назначения термическим методом

Медицинский инструмент стерилизуют в сухожаровом шкафу при температуре 180 градусов цельсия в течение 60 минут. Инструмент раскладывается свободно на сетки
Медицинский инструмент из коррозийно-стойкого материала и стекла стерилизуют в автоклаве при температуре 132 градуса при давлении 2 атм. в течение 20 минут. Инструмент укладывают в стерилизационные коробки квадратной формы
Предметы медицинского назначения из пластмассы и резины стерилизуют в автоклаве при температуре 110-120 градусов цельсия при давлении 1-1,5 атм. в течение 45 минут

Изделия, стерилизованные в стерилизационных коробках без фильтров в двойной мягкой упаковке из бязи или пергамента, стерильны в течение 3 суток, в стерилизационных коробках с фильтром - 20 суток

Дезинфекция изделий медицинского назначения


Таблица. Дезинфицирующие растворы и методы дезинфекции при различных инфекционных заболеваниях. Нажмите, чтобы увеличить

Примечание. После дезинфекции способом погружения (изделия покрыты раствором полностью), изделия медицинского назначения необходимо про мыть проточной водой в течение 3 минут до полного удаления дезинфицирующего раствора. Дезинфицирующие растворы должны иметь температуру не ниже 18°с. Дезинфицирующий раствор применяется однократно на одно замачивание. При использовании физического метода (кипячения в дистиллированной воде или в 2% содовом растворе) время экспозиции отсчитывается с момента закипания.