Test Coombsa jest pozytywny w przypadku jakiej niedokrwistości. Bezpośredni test Coombsa

- badanie pomagające określić zawartość niepełnych przeciwciał przeciw erytrocytom we krwi. Ten test antyglobulinowy pozwala wykryć przeciwciała u kobiet w ciąży.

Poza tym pozwala początkowe etapy diagnostyka niedokrwistości hemolitycznej u noworodków z konfliktem Rh. Pomaga to zapobiegać niszczeniu czerwonych krwinek niezbędnych do prawidłowego tworzenia krwi. Test ten został stworzony w 1945 roku przez Roberta Coombsa i dlatego otrzymał swoją nazwę.

Test Coombsa jest wszechstronnym testem, pozwalającym na szybkie rozpoznanie zaburzeń układu krwiotwórczego zarówno u dorosłych, jak i u dzieci.

Istnieć następujące typy takie testy:

1. Bezpośredni test Coombsa– pozwala na oznaczenie przeciwciał znajdujących się na powierzchni czerwonych krwinek. Zazwyczaj takie badanie jest przepisywane w przypadku podejrzenia hemolizy, autoimmunologicznej niedokrwistości hemolitycznej lub innych chorób autoimmunologicznych. Ponadto odbywa się to po terapia lekowa leki na bazie chininy, penicyliny lub metyldopy lub po transfuzji krwi. Aby uzyskać dokładniejsze wyniki należy całkowicie odstawić leki przynajmniej na 1 tydzień przed badaniem.
2. Pośredni test Coombsa– test umożliwiający wykrycie w osoczu przeciwciał przeciwko erytrocytom. Zwykle wykonuje się je w czasie ciąży i przed transfuzją krwi. Przeciwciała przeciw erytrocytom pojawiają się we krwi ludzkiej podczas reaktywnego funkcjonowania układu odpornościowego lub jako reakcja na niektóre leki. W celu dokładniejszego badania przeprowadza się kilka próbek jednocześnie w odstępie 2 godzin.

Wskazania do stosowania

Test Coombsa wykonuje się tylko w przypadku poważnych wskazań. To jest drogie i badanie długoterminowe, co jest specyficznym testem.

Zazwyczaj za wskazania do jego wdrożenia uznaje się następujące sytuacje:

1. Podczas transfuzji krwi. Badanie pozwala określić, czy krew biorcy zakorzeni się w organizmie człowieka, a także czy możliwe jest jej oddanie. W takim przypadku konieczne jest zbadanie materiału zarówno od dawcy, jak i biorcy. Ważne jest określenie charakteru przeciwciał, ponieważ jeśli są one niezgodne w organizmie na tle konfliktu Rh, układ odpornościowy ulega zniszczeniu. To prowadzi do rozwoju poważna choroba, i w w rzadkich przypadkach nawet śmierć.
2. Zanim interwencje chirurgiczne gdy istnieje ryzyko utraty krwi. Odbywa się to tak, że lekarz może natychmiast wprowadzić odpowiednią krew aby zregenerować ciało.
3. Aby wykryć uczulenie na Rh. Rezus to specyficzny antygen, który pojawia się w organizmie każdej kobiety w czasie ciąży. Jeśli matka Rh dodatni, a ojciec ma negatywną, lub odwrotnie, nie ma zależności od dziecka - może odziedziczyć każdego. Jeśli dziecko otrzyma od matki rezus przeciwny, istnieje duże ryzyko uczulenia. Zjawisko to charakteryzuje się mieszaniem się krwi matki i dziecka. Może się to zdarzyć zarówno w czasie ciąży, jak i podczas porodu.

Jeśli w ciele kobiety w ciąży wystąpi konflikt Rh, wówczas układ odpornościowy matki zaczyna postrzegać płód jako ciało obce. Z tego powodu istnieje duże ryzyko, że zacznie go atakować.

W wyniku takich działań dziecko może się rozwinąć poważne patologie. Najczęściej występuje erytroblastoza - zjawisko, w którym organizm dziecka nie jest w stanie produkować Wystarczającą ilość Czerwone krwinki

Ponadto, z powodu konfliktu Rh, śmierć płodu może nastąpić w łonie matki lub bezpośrednio po urodzeniu. Na właściwe podejście do leczenia takich poważne konsekwencje można łatwo uniknąć.

Odchylenia od normy

Jeżeli wynik testu Coombsa jest pozytywny, lekarz stwierdza, że ​​w surowicy krwi znajdują się przeciwciała przeciwko czerwonym krwinkom. Oznacza to, że krew dawcy może nie być zgodna z krwią pacjenta.

Jeśli w organizmie kobiety w ciąży zostanie zdiagnozowany pozytywny wynik Krew Rh ujemna, wówczas jej ciało zawiera przeciwciała przeciwko krwi płodu.

Wskazuje to na konflikt Rh, który wymaga od lekarza niezwykle ostrożnego podejścia do prowadzenia ciąży, a także przestrzegania wszystkich instrukcji i zaleceń kobiety.

Jeśli we krwi dziecka obecne są przeciwciała, rozpoznaje się chorobę hemolityczną noworodka. W takim przypadku przeprowadza się powtórne badanie w celu ustalenia, czy występuje wzrost poziomu przeciwciał we krwi przyszłej matki, czy nie.

Możliwe powikłania testu Coombsa

Test Coombsa - całkiem bezpieczne badania, co pozwala na diagnozowanie szeregu choroby autoimmunologiczne. Zwykle rzadko powoduje powikłania negatywne konsekwencje związane z pobieraniem krwi.

Oni są:

• Krwawienie lub krwotoki pod skórą
• Zawroty głowy i omdlenia
• Infekcja zakaźna

Wyświetlenia postów: 5792

• 1.Mikrobiologia medyczna. Przedmiot, zadania, metody, powiązania z innymi naukami. Znaczenie mikrobiologii lekarskiej w praktycznej działalności lekarza.
• 3. Mikroorganizmy i ich miejsce w systemie świata ożywionego. Nazewnictwo bakterii. Zasady klasyfikacji.
• 6. Wzrost i rozmnażanie bakterii. Fazy ​​reprodukcji.
• 7. Odżywianie bakterii. Rodzaje i mechanizmy odżywiania bakterii. Autotrofy i heterotrofy. Czynniki wzrostowe. Prototrofy i auksotrofy.
• 8. Pożywki. Sztuczne pożywki: proste, złożone, ogólnego przeznaczenia, planowe, diagnostyka różnicowa.
• 9. Bakteriologiczne metody badania mikroorganizmów. Zasady i metody izolacji czystych kultur bakterii tlenowych i beztlenowych. Charakter wzrostu mikroorganizmów na pożywkach płynnych i stałych.
• 13. Krętki, ich morfologia i właściwości biologiczne. Gatunek chorobotwórczy dla człowieka.
• 14. Riketsje, ich morfologia i właściwości biologiczne. Rola riketsii w patologii zakaźnej.
• 15. Morfologia i ultrastruktura mykoplazm. Gatunek chorobotwórczy dla człowieka.
• 16. Chlamydia, morfologia i inne właściwości biologiczne. Rola w patologii.
• 17. Grzyby, ich morfologia i cechy biologiczne. Zasady taksonomii. Choroby wywoływane przez grzyby u ludzi.
• 20. Oddziaływanie wirusa z komórką. Fazy ​​cyklu życia. Pojęcie trwałości wirusów i uporczywych infekcji.
• 21. Zasady i metody diagnostyki laboratoryjnej infekcji wirusowych. Metody hodowli wirusów.
• 24. Struktura genomu bakterii. Ruchome elementy genetyczne, ich rola w ewolucji bakterii. Pojęcie genotypu i fenotypu. Rodzaje zmienności: fenotypowa i genotypowa.
• 25. Plazmidy bakteryjne, ich funkcje i właściwości. Zastosowanie plazmidów w inżynierii genetycznej.
• 26. Rekombinacje genetyczne: transformacja, transdukcja, koniugacja.
• 27. Inżynieria genetyczna. Zastosowanie metod inżynierii genetycznej do otrzymywania leków diagnostycznych, profilaktycznych i terapeutycznych.
• 28.Rozmieszczenie drobnoustrojów w przyrodzie. Mikroflora gleby, wody, powietrza, metody jej badania. Charakterystyka mikroorganizmów wskaźnikowych sanitarnych.
• 29. Prawidłowa mikroflora organizmu człowieka, jej rola w procesach fizjologicznych i patologii. Pojęcie dysbakteriozy. Preparaty przywracające prawidłową mikroflorę: eubiotyki (probiotyki).
• 31. Formy manifestacji infekcji. Trwałość bakterii i wirusów. Pojęcie nawrotu, ponownej infekcji, nadkażenia.
• 32. Dynamika rozwoju procesu zakaźnego, jego okresy.
• 33. Rola mikroorganizmów w procesie zakaźnym. Patogeniczność i zjadliwość. Jednostki miary zjadliwości. Pojęcie czynników patogeniczności.
• 34. Klasyfikacja czynników chorobotwórczych wg o.V. Bucharin. Charakterystyka czynników chorobotwórczych.
• 35. Pojęcie immunitetu. Rodzaje odporności.
• 36. Nieswoiste czynniki chroniące organizm przed infekcją. Rola I.I. Miecznikowa w tworzeniu komórkowej teorii odporności.
• 37. Antygeny: definicja, podstawowe właściwości. Antygeny komórek bakteryjnych. Praktyczne zastosowanie antygenów bakteryjnych.
• 38. Budowa i funkcje układu odpornościowego. Współpraca komórek immunokompetentnych. Formy odpowiedzi immunologicznej.
• 39. Immunoglobuliny, ich budowa molekularna i właściwości. Klasy immunoglobulin. Pierwotna i wtórna odpowiedź immunologiczna. :
• 40. Klasyfikacja nadwrażliwości według Jaila i Coombsa. Etapy reakcji alergicznej.
• 41. Nadwrażliwość natychmiastowa. Mechanizmy występowania, znaczenie kliniczne.
• 42. Wstrząs anafilaktyczny i choroba posurowicza. Przyczyny występowania. Mechanizm. Ich ostrzeżenie.
• 43. Nadwrażliwość opóźniona. Testy alergiczne skórne i ich zastosowanie w diagnostyce niektórych chorób zakaźnych.
• 44. Cechy odporności przeciwwirusowej, przeciwgrzybiczej, przeciwnowotworowej, odporności transplantacyjnej.
• 45. Pojęcie immunologii klinicznej. Stan odporności człowieka i czynniki na niego wpływające. Ocena stanu odporności: główne wskaźniki i metody ich określania.
• 46. ​​Pierwotne i wtórne niedobory odporności.
• 47. Oddziaływanie antygenu z przeciwciałem in vitro. Teoria struktur sieciowych.
• 48. Reakcja aglutynacji. Komponenty, mechanizm, metody montażu. Aplikacja.
• 49. Reakcja Coombsa. Mechanizm. Składniki. Aplikacja.
• 50. Bierna reakcja hemaglutynacji. Mechanizm. Składniki. Aplikacja.
• 51. Reakcja hamowania hemaglutynacji. Mechanizm. Składniki. Aplikacja.
• 53. Reakcja wiązania dopełniacza. Mechanizm. Składniki. Aplikacja.
• 54. Reakcja neutralizacji toksyny antytoksyną, neutralizacja wirusów w hodowli komórkowej i organizmie zwierząt laboratoryjnych. Mechanizm. Składniki. Metody inscenizacji. Aplikacja.
• 55. Reakcja immunofluorescencyjna. Mechanizm. Składniki. Aplikacja.
• 56. Test immunologiczny enzymatyczny. Immunoblot. Mechanizmy. Składniki. Aplikacja.
• 57. Szczepionki. Definicja. Współczesna klasyfikacja szczepionek. Wymagania dotyczące produktów szczepionkowych.
• 59. Profilaktyka szczepionkowa. Szczepionki wykonane z zabitych bakterii i wirusów. Zasady gotowania. Przykłady zabitych szczepionek. Powiązane szczepionki. Zalety i wady zabitych szczepionek.
• 60. Szczepionki molekularne: toksoidy. Paragon. Zastosowanie toksoidów w profilaktyce chorób zakaźnych. Przykłady szczepionek.
• 61. Szczepionki modyfikowane genetycznie. Paragon. Aplikacja. Zalety i wady.
• 62. Terapia szczepionkowa. Koncepcja szczepionek terapeutycznych. Paragon. Aplikacja. Mechanizm akcji.
• 63. Diagnostyczne preparaty antygenowe: diagnostyka, alergeny, toksyny. Paragon. Aplikacja.
• 64. Sera. Definicja. Współczesna klasyfikacja serum. Wymagania dotyczące preparatów serwatkowych.
• 65. Preparatami przeciwciał są surowice stosowane w leczeniu i zapobieganiu chorobom zakaźnym. Metody uzyskiwania. Powikłania podczas stosowania i ich zapobieganie.
• 66. Preparaty przeciwciał to surowice stosowane w diagnostyce chorób zakaźnych. Metody uzyskiwania. Aplikacja.
• 67. Pojęcie immunomodulatorów. Zasada działania. Aplikacja.
• 68. Interferony. Natura, metody produkcji. Aplikacja. Nr 99 Interferony. Natura, metody produkcji. Aplikacja.
• 69. Leki do chemioterapii. Pojęcie wskaźnika chemioterapeutycznego. Główne grupy leków chemioterapeutycznych, mechanizm ich działania przeciwbakteryjnego.
• 71. Lekooporność drobnoustrojów i mechanizm jej występowania. Pojęcie szpitalnych szczepów mikroorganizmów. Sposoby przezwyciężenia lekooporności.
• 72. Metody diagnostyki mikrobiologicznej chorób zakaźnych.
• 73. Czynniki wywołujące dur brzuszny i dur brzuszny. Taksonomia. Charakterystyka. Diagnostyka mikrobiologiczna. Specyficzna profilaktyka i leczenie.
• 74. Patogeny escherichiozy. Taksonomia. Charakterystyka. Rola Escherichia coli w stanach normalnych i patologicznych. Diagnostyka mikrobiologiczna escherichiozy.
• 75. Patogeny shigellozy. Taksonomia. Charakterystyka. Diagnostyka mikrobiologiczna. Specyficzna profilaktyka i leczenie.
• 76. Patogeny salmonellozy. Taksonomia. Charakterystyka. Diagnostyka mikrobiologiczna salmonellozy. Leczenie.
• 77. Patogeny cholery. Taksonomia. Charakterystyka. Diagnostyka mikrobiologiczna. Specyficzna profilaktyka i leczenie.
• 78. Gronkowce. Taksonomia. Charakterystyka. Diagnostyka mikrobiologiczna chorób wywoływanych przez gronkowce. Specyficzna profilaktyka i leczenie.
• 79. Streptokoki. Taksonomia. Charakterystyka. Diagnostyka mikrobiologiczna zakażeń paciorkowcami. Leczenie.
• 80. Meningokoki. Taksonomia. Charakterystyka. Diagnostyka mikrobiologiczna zakażeń paciorkowcami. Leczenie.
• 81. Gonokoki. Taksonomia. Charakterystyka. Diagnostyka mikrobiologiczna rzeżączki. Leczenie.
• 82. Czynnik sprawczy tularemii. Taksonomia. Charakterystyka. Diagnostyka mikrobiologiczna. Specyficzna profilaktyka i leczenie.
• 83. Czynnik sprawczy wąglika. Taksonomia i charakterystyka. Diagnostyka mikrobiologiczna. Specyficzna profilaktyka i leczenie.
• 84. Czynnik sprawczy brucelozy. Taksonomia i charakterystyka. Diagnostyka mikrobiologiczna. Specyficzna profilaktyka i leczenie.
• 85. Czynnik wywołujący zarazę. Taksonomia i charakterystyka. Diagnostyka mikrobiologiczna. Specyficzna profilaktyka i leczenie.
• 86. Patogeny beztlenowej infekcji gazowej. Taksonomia i charakterystyka. Diagnostyka mikrobiologiczna. Specyficzna profilaktyka i leczenie.
• 87. Czynniki wywołujące zatrucie jadem kiełbasianym. Taksonomia i charakterystyka Diagnostyka mikrobiologiczna. Specyficzna profilaktyka i leczenie.
• 88. Czynnik sprawczy tężca. Taksonomia i charakterystyka. Diagnostyka i leczenie mikrobiologiczne.
• 89. Beztlenowce nie tworzące przetrwalników. Taksonomia. Charakterystyka. Diagnostyka i leczenie mikrobiologiczne.
• 90. Czynnik sprawczy błonicy. Taksonomia i charakterystyka. Warunkowo patogenne maczugowców. Diagnostyka mikrobiologiczna. Wykrywanie odporności anoksycznej. Specyficzna profilaktyka i leczenie.
• 91. Patogeny krztuśca i parakokluszu. Taksonomia i charakterystyka. Diagnostyka mikrobiologiczna. Specyficzna profilaktyka i leczenie.
• 92. Patogeny gruźlicy. Taksonomia i charakterystyka. Warunkowo chorobotwórcze prątki. Diagnostyka mikrobiologiczna gruźlicy.
• 93. Promieniowce. Taksonomia. Charakterystyka. Diagnostyka mikrobiologiczna. Leczenie.
• 95. Czynnik sprawczy chlamydii. Taksonomia. Charakterystyka. Diagnostyka mikrobiologiczna. Leczenie.
• 96. Czynnik sprawczy kiły. Taksonomia. Charakterystyka. Diagnostyka mikrobiologiczna. Leczenie.
• 97. Czynnik sprawczy leptospirozy. Taksonomia. Charakterystyka. Diagnostyka mikrobiologiczna. Specyficzna profilaktyka. Leczenie.
• 98. Czynnik sprawczy boreliozy. Taksonomia. Charakterystyka. Diagnostyka mikrobiologiczna.
• 99. Mikrobiologia kliniczna, jej zadania. Vbi, cechy przyczyny występowania.Rola drobnoustrojów warunkowo chorobotwórczych w występowaniu zakażeń szpitalnych.
• 100. Klasyfikacja grzybów. Charakterystyka. Rola w patologii. Diagnostyka laboratoryjna. Leczenie.
• 101. Klasyfikacja grzybic. Grzybice powierzchowne i głębokie. Grzyby drożdżopodobne z rodzaju Candida. Rola w patologii człowieka.
• 102. Czynnik wywołujący grypę. Taksonomia. Charakterystyka. Diagnostyka laboratoryjna. Specyficzna profilaktyka i leczenie.
• 103. Czynnik sprawczy polio. Taksonomia i charakterystyka. Diagnostyka laboratoryjna. Specyficzna profilaktyka.
• 104. Patogeny wirusowego zapalenia wątroby typu a i e. Taksonomia. Charakterystyka. Diagnostyka laboratoryjna. Specyficzna profilaktyka.
• stosować u pacjentów z hemolizą wewnątrznaczyniową. U niektórych z tych pacjentów wykrywane są przeciwciała anty-Rhesus, które są niekompletne i monowalentne. W szczególności oddziałują z erytrocytami Rh-dodatnimi, ale nie powodują ich aglutynacji. Dostępność takich niekompletne przeciwciała wyznaczane w pośredniej reakcji Coombsa. W tym celu do układu przeciwciał anty-Rh + erytrocyty Rh-dodatnie dodaje się surowicę antyglobulinową (przeciwciała przeciwko immunoglobulinom ludzkim), co powoduje aglutynację erytrocytów. Za pomocą reakcji Coombsa diagnozuje się stany patologiczne związane z wewnątrznaczyniową lizą erytrocytów pochodzenia immunologicznego, na przykład chorobę hemolityczną noworodka: erytrocyty płodu Rh-dodatniego łączą się z niepełnymi przeciwciałami przeciwko krążącemu we krwi czynnikowi Rh, które mają przeszło przez łożysko od matki Rh-ujemnej.

  Mechanizm. Trudność w identyfikacji przeciwciał niekompletnych (monowalentnych) wynika z faktu, że przeciwciała te wiążąc się z epitopami konkretnego antygenu nie tworzą struktury siatkowej, a reakcji pomiędzy antygenami a przeciwciałami nie wykrywa się ani poprzez aglutynację, wytrącanie, ani lub inne testy. Do identyfikacji powstających kompleksów antygen-przeciwciało konieczne jest zastosowanie dodatkowych układów testowych. W celu wykrycia niekompletnych przeciwciał np. przeciwko antygenowi Rh erytrocytów w surowicy krwi kobiety ciężarnej reakcję przeprowadza się dwuetapowo: 1) erytrocyty zawierające antygen Rh dodaje się do dwukrotnych rozcieńczeń surowicy testowej i przechowuje w 37 ° C przez godzinę; 2) Do dokładnie umytych po pierwszym etapie erytrocytów dodaje się króliczą surowicę anty-ludzką i antyglobulinę (we wstępnie miareczkowanym rozcieńczeniu roboczym). Po inkubacji przez 30 minut w temperaturze 37°C wyniki ocenia się na podstawie obecności hemaglutynacji (reakcja dodatnia). Należy kontrolować składniki reakcji: 1) surowica antyglobulinowa + krwinki czerwone, o których wiadomo, że są uczulone specyficznymi przeciwciałami; 2) erytrocyty traktowane surowicą prawidłową + surowicą antyglobulinową; 3) Erytrocyty Rh-ujemne traktowane surowicą testową + surowicą antyglobulinową.

  50. Bierna reakcja hemaglutynacji. Mechanizm. Składniki. Aplikacja.

  Pośrednia (bierna) reakcja hemaglutynacji(RNGA, RPGA) polega na wykorzystaniu erytrocytów (lub lateksu) z zaadsorbowanymi na ich powierzchni antygenami lub przeciwciałami, których oddziaływanie z odpowiednimi przeciwciałami lub antygenami surowicy krwi pacjenta powoduje, że erytrocyty sklejają się i opadają na dno naczynia krwionośnego. probówka lub kuweta w postaci zapiekanego osadu.

  Składniki. Do przeprowadzenia RNGA można wykorzystać erytrocyty owiec, koni, królików, kurczaków, myszy, ludzi i innych, które przechowuje się do przyszłego wykorzystania poprzez działanie formaldehydem lub aldehydem glutarowym. Zdolność adsorpcyjna erytrocytów wzrasta, gdy traktuje się je roztworami garbników lub chlorku chromu.

  Antygenami w RNGA mogą być antygeny polisacharydowe mikroorganizmów, ekstrakty szczepionek bakteryjnych, antygeny wirusów i riketsj, a także inne substancje.

  Czerwone krwinki uczulone na nadciśnienie nazywane są diagnostyką erytrocytów. Do przygotowania diagnostyki erytrocytów najczęściej wykorzystuje się erytrocyty owcze, które charakteryzują się dużą aktywnością adsorbcyjną.

  Aplikacja. RNGA służy do diagnozowania chorób zakaźnych, oznaczania hormonu gonadotropowego w moczu podczas ustalania ciąży, wykrywania nadwrażliwości na leki, hormony i w niektórych innych przypadkach.

  Mechanizm. Test hemaglutynacji pośredniej (IRHA) ma znacznie wyższą czułość i swoistość niż test aglutynacji. Służy do identyfikacji patogenu na podstawie jego struktury antygenowej lub do wskazania i identyfikacji produktów bakteryjnych - toksyn w badanym materiale patologicznym. W związku z tym stosuje się standardową (komercyjną) diagnostykę przeciwciał erytrocytowych, uzyskiwaną poprzez adsorpcję specyficznych przeciwciał na powierzchni garbowanych (poddanych działaniu garbników) erytrocytów. W studzienkach plastikowych płytek przygotowuje się seryjne rozcieńczenia materiału testowego. Następnie do każdej studzienki dodaje się równą objętość 3% zawiesiny czerwonych krwinek obciążonych przeciwciałami. Jeśli to konieczne, reakcję prowadzi się równolegle w kilku rzędach dołków z erytrocytami obciążonymi przeciwciałami o różnej swoistości grupowej.

  Po 2 godzinach inkubacji w temperaturze 37°C wyniki uwzględnia się w ocenie wygląd osad erytrocytów (bez wytrząsania): przy reakcji negatywnej na dnie studzienki pojawia się osad w postaci zwartego krążka lub pierścienia, przy reakcji pozytywnej - charakterystyczny koronkowy osad erytrocytów, cienki film o nierównych krawędziach .

  

Test Coombsa jest badaniem laboratoryjnym przeprowadzanym poprzez wpływ na hemaglutynację. Opiera się na wrażliwości przeciwciał na immunoglobuliny i elementy enzymatyczne, a także na ich zdolności do aglutynacji erytrocytów opłaszczonych C3 lub Lg.

Bezpośrednia diagnoza Coombsa

Służy do wykrywania przeciwciał lub składników dopełniacza zainstalowanych na zewnątrz komórek. Bezpośredni test Coombsa przeprowadza się w następujący sposób.

Zastosowanie takiej próbki

Bezpośrednią diagnostykę Coombsa stosuje się w niektórych przypadkach, takich jak:

• skutki transfuzji;
• hemoliza autoimmunologiczna;
• niedokrwistość hemolityczna polekowa.

Pośredni test Coombsa

Diagnoza ta umożliwia wykrycie przeciwciał przeciwko komórkom w surowicy, którą z reguły inkubuje się z czerwonymi krwinkami dawcy typu 0, a następnie przeprowadza się bezpośredni test. Pośrednią diagnostykę Coombsa stosuje się w następujących przypadkach:

Jak przygotować się do analizy

Istnieją pewne zasady przygotowania do egzaminu.

1. Jeśli pacjentem jest noworodek, rodzice muszą wiedzieć, że badanie pomoże zdiagnozować ONH ( choroba hemolityczna noworodki).
2. Jeśli pacjent ma podejrzenie niedokrwistości hemolitycznej, należy mu wyjaśnić, że analiza pozwoli mu ustalić, czy jest ona spowodowana zaburzeniami ochronnymi, przyjmowanymi lekami, czy też innymi czynnikami.
3. Test Coombsa, bezpośredni i pośredni, nie nakłada żadnych ograniczeń w zakresie odżywiania i diety.
4. Należy poinformować pacjenta, że ​​badanie będzie wymagało pobrania krwi z żyły, a także poinformować go dokładnie, kiedy zostanie wykonane wkłucie żyły.
5. Należy również ostrzec o takiej możliwości dyskomfort w okresie zakładania bandaża na ramię i samego zabiegu.
6. Należy odstawić leki mogące mieć wpływ na wynik próbki.

Leki te obejmują:

• "Streptomycyna";
• „Metyldopa”;
• „Prokainamid”;
• sulfonamidy;
• „Melfalan”;
• „chinidyna”;
• „Rifampicyna”;
• „Izoniazyd”;
• cefalosporyny;
• „Hydralazyna”;
• „Chlorpromazyna”;
• „Lewodopa”;
• „Tetracyklina”;
• „Difenylohydantoina”;
• „Etosuksymid”;
• "Penicylina";
• kwas mefenamowy.

Pobieranie krwi odbywa się rano, na pusty żołądek.

Jak odbywa się impreza

Test Coombsa przeprowadza się w następującej kolejności:

1. Podczas diagnostyki dorosłego pacjenta, po nakłuciu żyły, do probówek pobierana jest krew z EDTA (etylenodiaminotetraoctanem).
2. Krew noworodka pobiera się z pępowiny do zlewki zawierającej EDTA.
3. Miejsce nakłucia dociska się wacikiem aż do ustania krwawienia.
4. Jeśli w miejscu wkłucia żyły pojawi się siniak, przepisywane są ciepłe okłady.
5. Po pobraniu krwi pacjent może powrócić do przyjmowania leków.
6. Należy poinformować rodziców noworodka, że ​​w celu monitorowania dynamiki niedokrwistości może być konieczna analiza wtórna.

Zalety testu Coombsa

Takie badania mają pewne zalety, a mianowicie:

Wady analizy

Pozytywny test Coombsa jest dość pracochłonną metodą badania, wymagającą charakterystycznej dokładności wykonania. Używając go, możesz napotkać pewne trudności, zwłaszcza związane z interpretacją słabo pozytywnych efektów.

Ustalono, że błędnie ujemne lub słabo dodatnie reakcje podczas wykonywania testów Coombsa mogą być konsekwencją niezadowalająco aktywnego przemywania komórek, osłabienia odczynnika antyglobulinowego przez pozostałości surowicy, a także połączeń z nietłuszczowymi powierzchniami, na których antyglobulina może zostać naprawiona, tracąc w ten sposób swoją skuteczność.

Test Coombsa ma jeszcze jedną wadę - niską stabilność odczynnika antyglobulinowego, którego pozyskiwanie i przechowywanie Cechy indywidulane, co podobnie utrudnia liczbową ocenę wpływu surowicy antyglobulinowej na hemaglutynację.

Choroby, które można wykryć podczas badania

Diagnostyka Coombsa umożliwia wykrycie niektórych rodzajów chorób, takich jak:

• złe samopoczucie hemolityczne noworodka;
• różne reakcje transfuzyjne;
• hemoliza autoimmunologiczna;
• niedokrwistość hemolityczna polekowa.

Obecnie test Coombsa jest uważany za dość popularny system badania krwi zarówno u dorosłych, jak i noworodków. Pozwala rozpoznać wiele różnych chorób.

Bezpośredni test Coombsa ( bezpośredni test antyglobulinowy) to test laboratoryjny wykrywający przeciwciała przeciwko erytrocytom utrwalone na czerwonych krwinkach.

Wskazania do badania

Jakie są wskazania do badania: ustalenie immunologicznego charakteru niedokrwistości hemolitycznej.

Przygotowanie do badania

Jak przygotować się do badania:

1. Jeżeli pacjentem jest noworodek, rodzice powinni wyjaśnić, że badanie pomoże zdiagnozować HDN ( choroba hemolityczna noworodki).

2. Jeżeli u pacjenta podejrzewa się niedokrwistość hemolityczną, należy mu wyjaśnić, że badanie wykaże, czy jest ona spowodowana zaburzenia immunologiczne, zażywanie leków lub z innych powodów.

3. Nie są wymagane żadne ograniczenia dotyczące diety i odżywiania.

4. Należy uprzedzić pacjenta (lub rodziców noworodka), że badanie będzie wymagało pobrania krwi z żyły oraz poinformować go, kto i kiedy wykona wkłucie żyły.

5. Należy ostrzec o możliwości wystąpienia dyskomfortu podczas zakładania opaski uciskowej na ramię i wkłucia żyły.

6. Należy odstawić leki mogące mieć wpływ na wynik badania. Należą do nich chinidyna, metylodopa, cefalosporyny, sulfonamidy, chlorpromazyna, difenylohydantoina, etosuksymid, hydralazyna, lewodopa, kwas mefenamowy, melfalan, penicylina, prokainamid, ryfampicyna, streptomycyna, tetracykliny, izoniazyd.

Pobieranie krwi odbywa się rano, na czczo.

Materiał do analizy

Materiał do analizy:

Przeprowadzenie procedury

Jak przebiega procedura pobrania krwi:

1. Podczas wykonywania badania u dorosłego pacjenta po nakłuciu żyły, do probówek pobierana jest krew z EDTA.

2. Od noworodków pobiera się krew z pępowiny do probówki z EDTA.

3. Miejsce wkłucia żyły uciska się wacikiem aż do ustania krwawienia.

4. Jeśli w miejscu wkłucia żyły pojawi się krwiak, przepisuje się ciepłe okłady.

5. Po pobraniu krwi pacjent może wznowić przyjmowanie odstawionych leków.

6. Należy ostrzec rodziców noworodka, że ​​w celu monitorowania dynamiki niedokrwistości może być konieczne powtórne badanie.

Metoda bezpośredniego testu Coombsa:

Przeprowadza się to w następujący sposób:

Aby uzyskać przeciwciała przeciwko immunoglobuliny ludzkie(surowica antyglobulinowa) lub dopełniacz (surowica antydopełniacza), zwierzę immunizuje się surowicą ludzką, immunoglobulinami lub dopełniaczem ludzkim. Surowicę uzyskaną od zwierzęcia oczyszcza się z przeciwciał przeciwko innym białkom.

Czerwone krwinki pacjenta są myte roztwór soli Dla całkowite usunięcie surowicy, która neutralizuje przeciwciała przeciwko immunoglobulinom i dopełniaczowi i może powodować wynik fałszywie ujemny.

Jeśli przeciwciała lub składniki dopełniacza są utrwalone na powierzchni czerwonych krwinek, dodatek antyglobuliny lub surowicy przeciw dopełniaczowi powoduje aglutynację czerwonych krwinek.

Zalety i wady

Jakie są zalety i wady bezpośredniego testu Coombsa:

Zalety badania: wysoka czułość, znacznie przekraczająca rozdzielczość metody alternatywne testy stosowane do wykrywania przeciwciał nieaglutynujących.

Wady badania:

Bezpośredni test Coombsa jest pracochłonną metodą badawczą wymagającą szczególnej staranności w jej wykonaniu. Podczas jego stosowania pojawiają się pewne trudności związane w szczególności z interpretacją słów słabych pozytywne reakcje. Wiadomo, że fałszywe słabe pozytywne lub reakcje negatywne podczas wykonywania testów Coombsa mogą być następstwem niewystarczająco skutecznego wypłukania krwinek czerwonych, zneutralizowania odczynnika antyglobulinowego śladami surowicy, a także kontaktu z niezatłuszczoną powierzchnią, na której antyglobulina może się utrwalić, tracąc tym samym swoją aktywność .

Kolejną wadą testu Coombsa jest niestabilność odczynnika antyglobulinowego, którego przygotowanie i przechowywanie ma pewne cechy, co również utrudnia ilościowe określenie reakcji hemaglutynacji z surowicą antyglobulinową.

Czynniki wpływające na wynik badania

Jakie czynniki mogą mieć wpływ na wynik badania:

1. Hemoliza spowodowana nieostrożnym obchodzeniem się z próbką krwi.

2. Acetaminofen, kwas p-salicylowy, aminopiryna, leki przeciwhistaminowe, karbromal, cefalosporyny, insektycydy chlorowane węglowodany, chlorpromazyna, chlorpropramid, cisplatyna, klonidyna, dipyron, etosuksymid, fenfluramina, fuadyna, hydralazyna, hydrochlorotiazyd, ibuprofen, insulina, izoniazyd, lewodopa, kwas mefenamowy, melfalan, metadon, metylodopa, metylosergid, nomi fenzi nie , penicylamina, penicyliny, fenacetyna, fenylobutazon,probenecyd, prokainamid, chinidyna, chinina, ryfampicyna, streptomycyna, sulfonamidy, pochodne sulfonylomocznika, tetracyklina, triamteren, bezwodnik trimelitowy.

Test Coombsa to specyficzny test laboratoryjny, który wykrywa przeciwciała znajdujące się w lub na powierzchni czerwonych krwinek. Tej procedury pozwala zdiagnozować układ odpornościowy, w tym u noworodków, a także zidentyfikować hemolityczne reakcje transfuzyjne. Test Coombsa jest aktywnie stosowany w Medycyna sądowa i genetyka naukowa w celu określenia antygenów erytrocytów. Przestrzeganie wszystkich zasad przeprowadzania takiej analizy pozwala uzyskać najbardziej wiarygodny wynik.

Cel testu antyglobulinowego

Bezpośredni test Coombsa pozwala wykryć przeciwciała przeciwko erytrocytom, które są utrwalone na czerwonych krwinkach. Pozytywna reakcja w takim badaniu wskazuje na rozwój choroby autoimmunologicznej.Należy to zauważyć wynik negatywny nie wyklucza obecności, ponieważ przeciwciała często występują w postaci wolnej, to znaczy nie wiążą się z czerwonymi krwinkami. W takich przypadkach wskazane jest próbka pośrednia Coombsa, który umożliwi oznaczenie substancji autonomicznych w

Jak przeprowadzana jest analiza?

rodzić krew żylna pacjent przeprowadza się rano na czczo, mimo że nie ma na to znaczących czynników wpływających ostateczny wynik nie znaleziono takiego testu. Pobrany materiał wolno przechowywać w temperaturze od 2 do 8°C nie dłużej niż 7 dni. Aby uzyskać wskaźniki to badanie były jak najbardziej dokładne pełna krew należy dostarczyć do laboratorium w ciągu pierwszych dwóch godzin. Idealnie, test Coombsa powinien wykazywać wynik negatywny, co wskazuje na brak zmian hemolitycznych w organizmie.

Dekodowanie wskaźników końcowych

Test Coombsa jest dość pracochłonną metodą badawczą, wymagającą starannego i precyzyjnego wykonania. Przy stosowaniu takiego testu mogą pojawić się pewne trudności związane z błędną interpretacją wyników końcowych ze względu na słabą manifestację reakcji pozytywnych. Należy zauważyć, że nierzetelność analizy - a mianowicie pozytywny test Coombsa - może wynikać z nieskutecznego przemywania czerwonych krwinek, kontaktu z tłuszczami
powierzchni, a także neutralizacja odczynników antyglobulinowych przez składniki

serum. Kolejną wadą tej metody badawczej jest niestabilność pobranego materiału, którego przechowywanie ma pewne cechy.

Wynik fałszywie ujemny może być spowodowany nadmiernym wstrząsaniem zawiesiną czerwonych krwinek podczas ponownego zawieszania. Błędne wyniki mogą być także spowodowane obecnością zanieczyszczeń przeciwciałami antykomplementarnymi, które podczas inkubacji ulegają adsorbcji na powierzchni badanych krwinek czerwonych, co skutkuje pojawieniem się wynik pozytywny. Jeśli próbki do badań zostaną dokładnie umyte i kontrolowane warunki reakcji, niedociągnięcia te można łatwo wyeliminować, co zwiększy szanse na uzyskanie maksimum wiarygodne wskaźniki Testy Coombsa.